Как сделать укол подкожно в холку кошке видео: внутримышечно в ягодицу, укол самому себе в ногу

Техника правильного выполнения внутримышечных инъекций

04.07.2018

Внутримышечная инъекция – это простой и популярный метод введения медикаментов в организм человека. Однако при неаккуратном проведении этой процедуры могут возникнуть осложнения, избежать которых можно, если владеть правильной техникой ее выполнения.

Знание алгоритма процедуры внутримышечных инъекций нужно не только врачам. В жизни каждого человека может произойти ситуация, когда необходимо проколоть курс уколов самостоятельно. Прежде, чем отрабатывать внутримышечные инъекции на практике, нужно тщательно изучить теорию, касающуюся этой манипуляции. Соблюдение всех норм позволит избежать осложнений.

Места для инъекций

Наилучшие места для внутримышечных уколов – это верхняя часть ягодицы, широкая мышца бедра и дельтовидная мышца плеча. При выполнении инъекции в ягодицу ее нужно зрительно разделить на 4 квадранта. Укол делается в верхний наружный квадрант – это самый безопасный участок без крупных нервов и сосудов.

В случае бедра так же на 4 квадранта делят его переднюю поверхность. Колют во внешний наружный квадрант.

Правильное место для укола в плечо можно найти так: мысленно разделить руку от локтевого до плечевого сустава на 3 одинаковых участка. Центр средней области будет наиболее подходящим местом. Однако сделать укол в плечо без чьей-либо помощи сложнее, чем в бедро или ягодицу.

• Совет: если в/м инъекции назначены курсом, а не единичной процедурой, каждый раз выбирайте другое место, а также старайтесь не попадать в точки предыдущих уколов, чтобы не провоцировать воспаления и уплотнения.
• Важно: перед выполнением инъекции в любую мышцу ее нужно максимально расслабить, чтобы не допустить поломки иглы в процессе.

Этапы проведения уколов

Процедура внутримышечных инъекций делится на следующие этапы:

1. Готовятся медицинские расходные материалы. Нужны: стерильный шприц, лекарственный препарат в ампуле, салфетки спиртовые для инъекций (или спирт + ватные диски).
   Шприц нужно проверить на свободную проходимость иглы, пропустив через нее воздух посредством движением поршня. Если медикамент находится не в готовом растворе, а в порошке, то его нужно развести в правильных пропорциях специальным растворителем.
2. Проводятся асептика ампулы и набор лекарства. Ампула дезинфицируется спиртовой салфеткой в месте вскрытия, после чего раствор набирается внутрь шприца. Нужно стараться, чтобы игла не касалась стенок ампулы.
3. Выбирается место укола на теле пациента. После оно обрабатывается проспиртованной салфеткой – круговыми движениями наружу от центра. Это обязательная манипуляция в целях предотвращения осложнений внутримышечных инъекций.
4. Шприц очищается от воздуха. Шприц поднимается иглой вверх и из него выпускается воздух. Надавливать на поршень нужно, пока из иглы не появится маленькая капля препарата.
5. Делается инъекция. Она выполняется быстрым движением, под прямым углом. Лекарство нужно вводить постепенно, с равной силой надавливая на поршень шприца.
6. Шприц извлекается. После введения лекарства иглу резко достают под тем же углом, под которым она была введена, приложив к месту укола салфетку со спиртом и слегка помассировав ею кожу. Это так же важно сделать после укола, как и до него.

Возможные осложнения

Некорректное выполнение внутримышечного укола может спровоцировать появление различных осложнений: от незначительных до болезненных. Поэтому лучше ознакомиться с возможными из них еще до того, как они появятся:

• Гематома. Образуется, когда игла затрагивает кровеносный сосуд, либо в том случае, когда препарат вводят слишком быстро. Профилактикой небольших кровоизлияний является использование для уколов достаточно острых игл и соблюдение правильной техники. Если гематома уже образовалась, к ней нужно приложить спиртовой компресс. Для ускорения рассасывания гематом нужно наносить специально предназначенные для этого мази.
• Инфильтрат. Признак инфильтрата – это уплотнение и болезненность на месте укола. Они возникают при многочисленных инъекциях в одно и то же место и из-за неправильной техники введения лекарства. Чтобы не провоцировать возникновение инфильтрата, необходимо внимательно выбирать места для инъекции, менять их, контролировать температуру вводимых препаратов и правильно проводить все манипуляции. Если инфильтрат возник, рекомендуется приложить к нему согревающий компресс. Также ускоряет рассасывание уплотнений сетка из йода.
• Поломка иглы. Это может произойти из-за сильной напряженности в мышцах в процессе инъекции, из-за плохого качества иглы, а также из-за введения иглы до самой канюли. Чтобы не сломать иглу, ее нужно вводить на глубину не более 2/3 ее длины. Во время процедуры пациент должен лежать. Если игла сломалась, чтобы ее вытащить, нужно воспользоваться пинцетом. Если обломок попадет слишком глубоко под кожу, необходимо обратиться к врачу для его хирургического извлечения.
• Абсцесс. Если не следовать правилам обеззараживания, может развиться абсцесс – гнойное воспаление. Признаками являются покраснение кожи, боль, повышение общей температуры. Чтобы не допустить абсцесса, необходимо соблюдать правила асептики. Если осложнение уже произошло, назначается оперативное вмешательство.

Если от постинъекционного осложнения не удается избавиться самостоятельно, обязательно покажитесь медицинскому работнику.

Желаем, чтобы необходимые уколы проходили для вас всегда легко и безболезненно.

Как сделать укол кошке в холку или подкожно.

Иногда возникают ситуации, когда кошке необходимо срочно сделать укол, а доехать до специалиста нет возможности.  Любой владелец способен сделать эту несложную процедуру самостоятельно. Нужно лишь соблюдать несколько несложных правил и в этой статье мы их подробно разберем.

Что это?

Инъекция (укол) — это введение жидкости в организм кошки путем прокалывания кожи в определенные участки органов и тканей. Для этих целей используется шприц. Имеются ограничения по вводимым объемам лекарственных препаратов. Это зависит и от места введения препарата и от его свойств.. Также существуют и другие определенные правила проведения уколов, которые обязательно знать, перед тем как начинать свою «ветеринарную практику».

Зачем нужно учиться делать уколы?

Умение делать уколы позволит вам сэкономить  время и деньги, и возможно спасет жизнь вашей кошке  в чрезвычайной ситуации. Кроме того,  на этом можно зарабатывать, помогая другим.

Правило №1: Соблюдение стерильности инструментов и препаратов. ВСЕГДА!
Правило №2: Соблюдение дозировок и места введения!
Правило №3: Вы должны четко знать, ЧТО ИМЕННО вы хотите ввести кошке, в каком объеме и куда.
Правило №4: Все манипуляции выполнять четко и быстро. У вас нет права на ошибку.

Выбор шприца для инъекции.

Выбор шприца зависит от объема, необходимого для введения и физических свойств самого препарата: вязкости и наличия хлопьев, взвесей. Прозрачные, текучие растворы нужно вкалывать иглой с наименьшим диаметром ( около 0.5мм).  Для густых, вязких растворов необходимо взять иглу большего диаметра (0.6-0.8мм). В противном случае процесс введения будет довольно затруднителен.

Если нужно ввести 1мл, то и брать нужно шприц именно на 1мл, а не на 5 или 10мл (потому что у вас их много завалялось)

Набор лекарства

• Руки нужно вымыть с мылом непосредственно перед проведением процедуры.
•  Упаковку со шприцем вскрывать непосредственно перед манипуляцией.
•  Не допускать касаний до стерильной иглы какими либо предметами или руками
•  Не использовать препараты из ранее открытых ампул.
•  Для того, чтобы не выбрасывать препараты, которые не использовались сразу (например ампула 2мл, а ввести за раз нужно только 1мл) необходимо набрать препарат в разные стерильные шприцы и хранить не более 3-х дней в холодильнике (перед использованием – довести до комнатной температуры ). Но не все препараты можно сэкономить, после вскрытия флакона или ампулы.  Сухие препараты нужно растворять (читайте инструкцию к препарату). И их необходимо  готовить непосредственно перед применением. Остатки препарата придется выбросить, даже если это очень дорого. В инструкции к лекарственному средству обычно указывается о возможности хранения препарата после вскрытия ампулы или флакона. Не смешивайте разные препараты в одном флаконе или шприце, если только это не по рекомендации специалиста. Если в процессе приготовления препарата произошло выпадение нерастворимого осадка, то лучше не использовать данное средство.
•  Не используйте ампулы со стертыми маркировками, даже если вы точно уверены, что это за средство. Ампулы мог кто-то перепутать, а ошибка в данном случае может иметь самые печальные последствия.
•  Обязательно проверяйте сроки годности на конкретной ампуле, а не на упаковке. Категорически нельзя использовать просроченные средства. В лучшем случае не получите желаемого эффекта, а в худшем – последствия не предсказуемы.
•  Убедитесь, что препарат вводится именно подкожно (некоторые препараты категорически нельзя вводить подкожно) и что он пригоден для ветеринарного применения.
•  Внимательно прочитайте инструкцию к препарату. Там могут быть указаны особые условия: встряхивать, смешивать — не смешивать, режимы хранения, способы введения и противопоказания.
•  Стекло на тонком кончике ампулы надпиливается специальной пилкой.
•  Обернув ваткой нажимая на верхушку в направлении от себя, кончик отламывается. В последнее время все чаще на ампулах есть точка-индикатор или специальное кольцо. Если надавить на кончик ампулы в противоположную сторону от кружка, он отколется без надпиливания. Введите иглу в ампулу, осторожно и, стараясь не касаться стенок ампулы. Не спеша набирайте необходимое количество препарата.  Держа шприц иглой вверх, легким постукиванием пальцем по стенкам шприца добейтесь, чтобы все пузыри воздуха внутри собрались в один большой пузырь в районе иглы.  Выдавить воздух из шприца. При этом выйдет пара капель препарата. Иглу не протирать!!! Закрыть колпачком и шприц можно положить для выполнения других манипуляций.

Все готово для введения!

Где делать укол подкожно?

Кожа покрывает практически все тело животного, но наиболее удобными и безопасными местами для инъекций считается холка (между лопаток) и область коленной складки (сбоку возле колена). Холка – практически единственное место на теле кошки, куда она не может добраться языком или лапами. Это важно, так как животное не сможет расчесать или полизать место укола.  Так же кожа на холке менее чувствительна от природы и укол не будет таким болезненным, как если колоть в другие места.

Процесс прокола

Кошка должна быть прочно зафиксирована, для этого нужен помощник. Кожу в месте прокола обрабатывать не надо. Кожа покрыта густой шерстью, вы все равно не доберетесь ваткой до самой кожи. К тому же, сама кожа животных имеет сильный антибактериальный барьер — ранки быстро заживают. Прежде, чем сделать прокол, надо подтянуть складку кожи наверх и в основание складки, под углом приблизительно 45 градусов,  вколоть иглу не глубже, чем подкожное пространство. При продвижении иглы через кожу будет чувствоваться сопротивление её ходу. Как только игла проколет кожный покров, ее ход значительно облегчится. Нужно следить, чтобы игла не проколола складку насквозь. В таком случае препарат выльется наружу. Так же нужно убедиться, что игла не ушла в нижележащие ткани, а находится именно в подкожном пространстве. Проверив все это можно вводить препарат.

С какой скоростью можно вводить препарат? Сколько можно ввести в одно место?

Скорость введения препарата при подкожном введении не играет особой роли (но без фанатизма). В одно место рекомендуется вводить не более 6-9 мл/кг веса. Если требуется ввести больший объем препарата, то делают несколько инъекций в разные места. Если планируется использовать несколько шприцов, то, не вытаскивая иглы, подсоединяют только новые шприцы, чтобы не травмировать лишний раз кожу. Но данный способ пригоден только для профессионалов. Если у вас не хватает должных навыков – лучше не использовать такой способ.

В случае длительного курса лечения.

Бывают ситуации, когда необходим продолжительный курс лечения с применением инъекций. Так как кошка никогда не поймет, ЧТО вы с ней делаете, то каждая инъекция наносит значительный урон психике животного. Если это возможно – лучше заменить препараты на формы, вводимые через рот (порошки, таблетки, капли) или которые добавляются в пищу. К сожалению, не все препараты имеют такое разнообразие лекарственных форм. В любом случае нужно проконсультироваться у ветеринара.

После инъекции идет кровь

Любая инъекция — это  микротравма с нарушением целостности кожного покрова и кровеносных сосудов. Небольшая капелька крови на поверхности кожи не представляет никакой опасности. Но если происходит кровотечение — приложите холод на 10-15 минут. Сосуды рефлекторно сузятся и кровотечение остановится. В особо тяжелых случаях нужно незамедлительно обратиться к  ветеринару.

Кошка поджимает лапу (при введении в коленную складку)

Это вызвано раздражающим действием препаратов. Это скоро пройдет. Гораздо опаснее, если лапа волочиться, как тряпочка. Возможно, игла попала в нерв. Обратитесь к врачу и готовьтесь к курсу новокаиновых блокад, обычно все проходит (но блокады обязательны).

Вот небольшое видео о том, как сделать укол в домашних условиях:

И помните, чем дольше мы возимся, тем меньше терпения остается у пациентов. Не надо сюсюкать и уговаривать. Так животное еще больше начнет тревожиться. Желательно все сделать точно и быстро – так вы будете меньше мучить себя и кошку. Инъекции самому можно делать, только если вы полностью уверены в себе и в своих действиях. В противном случае откажитесь от манипуляций и доверьтесь профессионалам.

ЧИТАЙТЕ ТАКЖЕ:

Серения (Cerenia), раствор для инъекций против рвоты

Серения (Cerenia), раствор для инъекций против рвоты

Подробности

Просмотров: 21278

 

Серения (Cerenia) - таблетки против рвоты для собак

Инструкция по применению
препарата Серения в качестве противорвотного средства у собак и кошек
(организация-разработчик компания «Zoetis Inc» США)
Утверждена 13 декабря 2013 года.

 

I. Общие сведения

Торговое наименование лекарственного препарата: Серения (Cerenia).
Международное непатентованное наименование: маропитанта цитрат.

Лекарственная форма: раствор для инъекций.

Серения содержит в 1 мл в качестве действующего вещества маропитанта цитрат - 10 мг, а в качестве вспомогательных веществ - метакрезол - 3,3 мг, сульфобутиловый эфир (бета-циклодекситрина натрия - 63 мг и воду для инъекций - до 1 мл. По внешнему виду препарат представляет собой прозрачную жидкость светло-желтого цвета.

Препарат расфасован по 20 мл в стеклянные флаконы, укупоренные резиновыми пробками, укрепленными алюминиевыми колпачками. Флаконы упакованы в индивидуальные картонные коробки. В каждую коробку с препаратом вкладывают инструкцию по его применению.

Серению хранят в закрытой упаковке производителя, в сухом, защищенном от прямых солнечных лучей месте, отдельно от продуктов питания и кормов при температуре от 3°С до 25°С.

Срок годности лекарственного препарата при соблюдении условий хранения составляет 3 года с даты производства. После отбора из флакона части препарата, при условии соблюдения правил асептики и указанных условий хранения, его можно использовать многократно, в течение 90 дней. Запрещается применять препарат Серения после истечения срока годности.

Препарат хранят в местах, недоступных для детей.

Неиспользованный лекарственный препарат утилизируют в соответствии с требованиями законодательства.

 

II. Фармакологические свойства

Серения относится к группе противорвотных средств.

Действующее вещество Серении - маропитанта цитрат - является антагонистом нейрокининовых рецепторов (NK1) и ингибирует связывание субстанции Р, нейтропептида тахикининовой группы в ЦНС. Маропитант эффективен при рвоте как центрального, так и периферического генеза.

Маропитант быстро всасывается после подкожного введения и через 45 минут достигает максимальной концентрации в крови. Биодоступность препарата составляет 90%. Маропитант более чем на 99% связывается с белками плазмы крови. Маропитант метаболизируется в печени цитохромом Р450, выделяется главным образом с фекалиями.

По степени воздействия на организм маропитанта цитрат относится к умеренно опасным веществам (3 класс опасности по ГОСТ 12.1.007-76).

 

III. Порядок применения

Серению применяют для предотвращения у собак и кошек рвоты различного генеза.

Беременным и лактирующим животным препарат применять не рекомендуется. Запрещается применение препарата животным с повышенной индивидуальной чувствительностью к компонентам препарата.

Препарат вводят:

собакам - подкожно в дозе 1 мг/кг массы животного, что эквивалентно 1 мл препарата на 10 кг массы животного, один раз в сутки в течение не более чем 5 суток.
кошкам - подкожно в дозе 1 мг/кг массы животного, что эквивалентно 1 мл препарата на 10 кг массы животного, один раз в сутки в течение не более чем 5 суток.

Симптомы передозировки не установлены.

Особенностей действия при начале введения и отмене препарата не выявлено.

Следует избегать пропусков при введении очередной дозы препарата, так как это может привести к снижению эффективности. В случае пропуска одной дозы следует возобновить курс лечения в предусмотренных инструкцией дозировках и схеме применения.

При применении Серении в соответствии с инструкцией побочных явлений и осложнений, как правило, не отмечается. В случае появления аллергических реакций использование препарата прекращают и назначают антигистаминные средства и симптоматическое лечение.

Сведения о взаимодействии Серении с другими лекарственными препаратами отсутствуют.

Лекарственный препарат не предназначен для применения продуктивным животным.

IV. Меры личной профилактики

При работе с препаратом Серения следует соблюдать общие правила личной гигиены и техники безопасности, предусмотренные при работе с лекарственными препаратами. По окончании работы руки следует вымыть теплой водой с мылом.

При случайном контакте лекарственного препарата с кожей или слизистыми оболочками глаз, их необходимо промыть большим количеством воды. Людям с гиперчувствительностью к компонентам Серении следует избегать прямого контакта с лекарственным препаратом. В случае появления аллергических реакций или при случайном попадании препарата в организм человека следует немедленно обратиться в медицинское учреждение (при себе иметь инструкцию по применению или этикетку).

Пустые флаконы из-под лекарственного препарата запрещается использовать для бытовых целей, они подлежат утилизации с бытовыми отходами.

Организация-производитель: «Pfizer PGM» 37530 Росе sur Cisse France.
Инструкция разработана компанией «Zoetis Inc.» (100 Campus Drive , Florham Park, New Jersey, 07932 USA)

 

FDA одобрило поправку в инструкцию по применению противорвотного препарата Серения (Cerenia)

Управление по контролю за продуктами и лекарствами США одобрило внесение изменений, посвященных включению лечения рвоты у кошек старше 16 недель, в инструкцию по применению противорвотного ветеринарного препарата Серения (маропитанта цитрат) в форме раствора для инъекций, сообщает производитель препарата - компания Пфайзер Энимал Хелс (Pfizer Animal Health).

Кроме того, в соответствие с новой инструкцией, рекомендованный возраст собак, которым можно назначать препарат для лечения и профилактики острой рвоты, уменьшается с 16 до 8 недель, как в форме раствора для инъекций, так и в таблетках – формы препарата Серения, впервые зарегистрированной в Соединенных штатах в 2007 г.

Раствор для инъекций обычно используют для лечения рвоты в условиях клиники, тогда как таблетки предназначены для использования на дому.
Таблетки Серения (Cerenia tablets) так же одобрены для профилактики рвоты при укачивании у собак старше 16 недель.

«Учитывая положительные результаты применения препарата Серения и его значимость для ветеринаров им владельцев животных, компания Пфайзер Энимал Хелс была настроена на обеспечение научного обоснования этих изменений в инструкции по применению препарата, чтобы сделать возможным эффективное лечение рвоты кошек и более молодых собак», говорит доктор ветеринарной медицины, дипломированный член Американского совета практикующих ветеринарных врачей, руководитель группы ветеринарных разработок подразделения домашних животных компании Пфайзер Энимал Хелс Дж. Майкл МакФарланд.

Скачать Серения (Cerenia) - коммерческий вкладыш в упаковку, инструкция по применению.
Скачать Серения (Cerenia) - описание препарата, документация.

Купить Серения (Cerenia) в городе Днепр (Днепропетровск) можно в ветеринарной аптеке ветеринарной клиники Котофей, цена должна быть уточнена.

Неожиданные хозяева: визуализация паразитарных заболеваний

Паразит, его цикл и заражение человека

Clonorchis sinensis — печеночный сосальщик, эндемичный Восточная Азия, включая Северо-Восточный Китай, Маньчжурию, Корею, бассейн Амура в Россия, Тайвань и Вьетнам [65]. Opisthorchis viverrini и O. felineus имеют очень похожие жизненные циклы. почти неразличимые клинические и визуализационные данные [66].

Жизненный цикл C. sinensis требует 3 разных хозяев: пресноводных улиток (преимущественно Parafossarulus spp и Bithynia spp), пресноводная рыба (карповые семейство) и млекопитающие (т. г. люди, собаки, кошки, свиньи, крысы, значки или ласки). Улитки поедают яйца C. sinensis, которые превращаются в личиночную стадию. (церкарии). Церкарии выделяются в воду и активно внедряются в слизистые оболочки или кожа рыб инцистируется (метацеркарии) в их мышцы и мягкие ткани. [67, 68].

Окончательные хозяева, включая человека, поражаются при употреблении сырых или плохо приготовленная зараженная рыба. Метацеркарии выделяются в двенадцатиперстную кишку и мигрируют к желчному дереву через фатерову ампулу, заселяя внутрипеченочные желчные протоки, где они превращаются во взрослых червей.Выпущенные яйца идут вниз по течению снова в двенадцатиперстную кишку и выводятся с фекалиями хозяина замыкание жизненного цикла [67, 68].

C. sinensis хорошо адаптирован к желчным путям человека и способен колонизировать их с небольшими симптомами или без них вообще. Большинство клинических проявления и, следовательно, результаты визуализации, зависят от количества сосальщиков внутри желчевыводящих путей и возникают из-за обструкции желчных протоков, что приводит к холангит (восточный холангиогепатит).

Серьезные осложнения — камни в желчном пузыре, камни и цилиндры внутри расширены желчных протоков, гнойный холангит, абсцессы печени, холецистит, гепатит или даже цирроз.При тяжелых инфекциях могут поражаться протоки поджелудочной железы [62–66].

C. sinensis является известным фактором риска холангиокарциномы из-за хроническое воспаление и повреждение билиарного эпителия [63, 68–71]. Некоторые авторы также предложили дополнительные потенциальные ассоциации клонорхов с другими билиопанкреатические новообразования, например, муцинозная цистаденома поджелудочной железы [72], хотя, вероятно, нужны расследования.

Результаты визуализации

Типичные результаты визуализации: диффузное расширение периферических внутрипеченочные желчные протоки, в которых селятся сосальщики.Центральный внутрипеченочный и внепеченочные протоки часто остаются нетронутыми.

УЗИ используется в качестве метода скрининга в эндемичных районах. Это характерно расширение внутрипеченочных протоков с утолщением стенки и окружающий гиперэхогенный ореол, предположительно вызванный перидуктальным фиброзом. Желчный пузырь и желчные протоки могут быть заполнены детритом и/или желчными камнями, а иногда и сами трематоды могут быть видны как движущиеся эхогенные очаги (Инжир. .

Клонорхоз у женщины 50 лет родом из Китая. а. Аксиальное изображение УЗИ показывает легкую дилатация холедоха с необструктивным желчным камнем. б. На КТ с контрастным усилением видно расширение внутрипеченочные желчные протоки в правой доле, с перидуктальным усиление и внутрипросветное твердое содержимое (мусор, паразиты), включая желчные камни и цилиндры ( стрелки ). Обратите внимание гиперемия окружающей паренхимы печени ( звездочка ), вторичное по отношению к острому воспалительному изменения

КТ и МРТ, особенно холангиографические последовательности, также показывают расширенные желчные протоки с утолщенными стенками.Перидуктальное усиление после в/в введение контраста свидетельствует об активном воспалении (рис. ) [68, 72–75]. МР-холангиография может показать сосальщиков как слабосигнальные материала в расширенных протоках. Холангиограмма имеет высокую чувствительность в обнаружение паразитов, которые проявляются в виде линейных или овальных дефектов наполнения до 10 мм [69, 76–78].

Клонорхоз может имитировать другие хронические воспалительные желчные процессы, а именно рецидивирующий пиогенный холангит и первичный склерозирующий холангит, вынуждая радиолога быть точным и тесно коррелировать с клиническим картина и история болезни пациента [77].

Проблемы измерения температуры тела свободноживущих птиц и млекопитающих | Биотелеметрия животных

Рэндалл Д., Бурггрен В., Френч К. Эккерт Физиология животных: механизмы и адаптации. Эккерт, физиология животных: механизмы и приспособления, том. 4. 1997.

Хоффманн А.А., Чоун С.Л., Клюзелла-Труллас С. Верхние термические пределы наземных эктотерм: насколько они ограничены? Функция Экол. 2013;27(4):934–49. doi:10.1111/j.1365-2435.2012.02036.x.

Артикул Google Scholar

">

Думан Ю.Г.Раннее классическое исследование предотвращения замерзания морских рыб. J Эксперт Биол. 2014;217(6):820–3. дои: 10.1242/jeb.092239.

ПабМед Статья Google Scholar

Кларк А., Портнер Х-О. Температура, метаболическая мощность и эволюция эндотермии. Биол Рев. 2010;85(4):703–27. doi:10.1111/j.1469-185X.2010.00122.x.

ПабМед Google Scholar

Кларк А., Ротери П.Шкалирование температуры тела у млекопитающих и птиц. Функция Экол. 2008;22(1):58–67. doi:10.1111/j.1365-2435.2007.01341.x.

Google Scholar

Барнс Б.М. Предотвращение замерзания у млекопитающего — температура тела ниже 0 градусов по Цельсию в условиях арктической спячки. Наука. 1989; 244(4912):1593–5. дои: 10.1126/наука.2740905.

КАС пабмед Статья Google Scholar

">

Халик И., Хоф К., Принцингер Р., Бенинг-Гейзе К., Пфеннингер М.Глобальные различия в термостойкости и уязвимость эндотермов к изменению климата. Proc R Soc B Biol Sci. 2014; 281 (1789). doi:10.1098/rspb.2014.1097.

Сандей Дж.М., Бейтс А.Э., Далви Н.К. Глобальный анализ термоустойчивости и широты у экзотермов. Proc R Soc B Biol Sci. 2011; 278 (1713): 1823–30. doi: 10.1098/rspb.2010.1295.

Артикул Google Scholar

Яхав С. Регуляция температуры тела: стратегии и механизмы, глава 37.В: Scanes CG, редактор. Птичья физиология Стерки. 6-е изд. Сан-Диего: Академическая пресса; 2015. с. 869–905.

Google Scholar

Тейлор Н.А.С., Типтон М.Дж., Кенни Г.П. Рекомендации по измерению центральной, кожной и средней температуры тела. Дж Терм Биол. 2014; 46:72–101. doi: 10.1016/j.jtherbio.2014.10. 006.

ПабМед Статья Google Scholar

Миссон БХ.Примечание об измерении температуры тела у Gallus domesticus . Дж Терм Биол. 1978;3(3):175–6. дои: 10.1016/0306-4565(78)

-3.

Артикул Google Scholar

Грин А.Р., Гейтс С.Г., Лоуренс Л.М. Измерение внутренней температуры тела лошади. Дж Терм Биол. 2005;30(5):370–7. doi: 10.1016/j.jtherbio.2005.03.003.

Артикул Google Scholar

Озеки Л.М., Фалман А., Стенхаус Г., Арнемо Дж.М., Колкетт Н.Оценка точности различных методов контроля температуры тела у наркотизированных бурых медведей ( Ursus arctos ). J Zoo Wildl Med. 2014;45(4):819–24. дои: 10.1638/2014-0039.1.

ПабМед Статья Google Scholar

">

Торрао Н.А., Хетем Р.С., Мейер Л.Р., Фик Л.Г. Оценка использования термочувствительных микрочипов для определения внутренней температуры тела у коз. Вет запись. 2011;168(12):328–45. дои: 10.1136/вр.c6200.

КАС Статья Google Scholar

Спецвыпуск по. Вклад радиотелеметрии в развитие исследований терморегуляции. Дж Терм Биол. 2012;37(4):249. doi: 10.1016/j.jtherbio.2012.03.001.

Артикул Google Scholar

МакКафферти Диджей. Применение тепловидения в орнитологии. Ибис. 2013;155(1):4–15. дои: 10.1111/ibi.12010.

Артикул Google Scholar

Лавгроув БГ. Модификация и миниатюризация Thermochron iButtons для хирургической имплантации мелким животным. J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol. 2009;179(4):451–8. doi:10.1007/s00360-008-0329-x.

Артикул Google Scholar

Wacker CB, Daniella Rojas A, Geiser F. Использование небольших подкожных транспондеров для количественной оценки термобиологии и оцепенения у мелких млекопитающих.Дж Терм Биол. 2012;37(4):250–4. doi: 10.1016/j.jtherbio.2011.11.007.

Артикул Google Scholar

Лангер Ф., Фитц Дж. Способы измерения температуры тела в полевых условиях. Дж Терм Биол. 2014; 42:46–51. doi: 10.1016/j.jtherbio.2014.03.002.

ПабМед Статья Google Scholar

Nord A, Nilsson JF, Sandell MI, Nilsson J-Å. Закономерности и динамика гипотермии в фазе покоя у диких и содержащихся в неволе лазоревок зимой.J Comp Physiol B. 2009;179(6):737–45. doi: 10.1007/s00360-009-0357-1.

ПабМед Статья Google Scholar

">

Nord A, Nilsson JF, Nilsson J-Å. Ночная температура тела у зимующих лазоревок зависит от температуры места ночевки и запасов тела. Экология. 2011;167(1):21–5.

ПабМед Статья Google Scholar

vdB Morkel P, Miller M, Jago M, Radcliffe RW, du Preez P, Olea-Popelka F, et al.Серийный мониторинг температуры и сравнение ректальной и мышечной температуры у обездвиженных черных носорогов на свободном выгуле ( Diceros bicornis ). J Zoo Wildl Med. 2012;43(1):120–4.

ПабМед Статья Google Scholar

Хафторн С. Гипотермия синиц арктической зимой. Орнис Сканд. 1972;3(2):153–66.

Артикул Google Scholar

Моллер А.П.Температура тела и лихорадка у свободноживущей птицы. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol. 2010;156(1):68–74.

ПабМед Статья КАС Google Scholar

Перейра М.Е., Мортон М.Л. Рост птенцов и развитие терморегуляции у субальпийских сумеречных мухоловок. Аук. 2001;118(1):116–36.

Артикул Google Scholar

Норд А., Скёльд-Кириак С., Хассельквист Д., Нильссон Й-Е.Компромисс между предполагаемым риском нападения хищников и сохранением энергии, выявленный в ходе эксперимента с иммунным вызовом. Ойкос. 2014;123(9):1091–100. дои: 10.1111/oik.01221.

Google Scholar

Piccione G, Caola G, Refinetti R. Созревание суточного ритма температуры тела у овец и лошадей. Дж Терм Биол. 2002;27(5):333–6. doi: 10.1016/s0306-4565(01)00076-6.

Артикул Google Scholar

Bouwknecht JA, Olivier B, Paylor RE. Парадигма гипертермии, вызванной стрессом, как физиологическая модель тревоги у животных: обзор фармакологических и генетических исследований на мышах. Neurosci Biobehav Rev. 2007;31(1):41–59. doi:10.1016/j.neubiorev.2006.02.002.

КАС Статья Google Scholar

Busnardo C, Tavares RF, Resstel LBM, Elias LLK, Correa FMA. Паравентрикулярное ядро ​​модулирует вегетативные и нейроэндокринные реакции на острый иммобилизационный стресс у крыс.Базовая клиника Auton Neurosci. 2010;158(1–2):51–7. doi:10.1016/j.autneu.2010.06.003.

КАС Статья Google Scholar

Благословение WW. Пути нижнего ствола мозга, регулирующие симпатически опосредованные изменения кожного кровотока. Селл Мол Нейробиол. 2003;23(4–5):527–38. doi:10.1023/a:1025020029037.

КАС пабмед Статья Google Scholar

">

Адамс, Нью-Джерси, Пиншоу Б., Ганнес Л.З., Бибах Х.Температура тела свободно летающих голубей. J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol. 1999;169(3):195–9. doi: 10.1007/s003600050211.

Артикул Google Scholar

Грей Д.А., Мэлони СК, Камерман Пр. Сдержанность повышает афебрильную температуру тела, но ослабляет лихорадку у пекинских уток ( Anas platyrhynchos ). Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2008; 294(5):R1666–71.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Hill RD, Schneider RC, Liggins GC, Schuette AH, Elliott RL, Guppy M, et al.Температура во время свободного погружения тюленей Уэдделла. Am J Physiol. 1987; 253(2):R344–51.

КАС пабмед Google Scholar

Понганис П.Дж., Ван Дам Р.П., Левенсон Д.Х., Ноуер Т. , Понганис К.В., Маршалл Г. Региональная гетеротермия и сохранение внутренней температуры у императорских пингвинов, ныряющих под морской лед. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 2003;135(3):477–87. doi: 10.1016/s1095-6433(03)00133-8.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Меир Ю., Понганис П.Дж.Профили температуры крови ныряющих морских слонов. Физиол Биохим Зоол. 2010;83(3):531–40. дои: 10.1086/651070.

ПабМед Статья Google Scholar

Бенедикт ФГ. Физиология слона. Вашингтон: Институт Карнеги; 1936.

Google Scholar

Jensen SA, Mundry R, ​​Nunn CL, Boesch C, Leendertz FH. Неинвазивное измерение температуры тела диких шимпанзе с использованием снижения температуры фекалий.Дж. Уайлдл Дис. 2009;45(2):542–6.

ПабМед Статья Google Scholar

">

Acquarone M, Born EW, Griffiths D, Knutsen LØ, Wiig Ø, Gjertz I. Оценка эторфина, обращенного дипренорфином, для иммобилизации свободноживущих атлантических моржей ( Odobenus rosmarus rosmarus L.), vol. 9. Научные публикации NAMMCO; 2015. Дои: 10.7557/3.2944.

Люббе А., Хетем Р.С., МакФарланд Р., Барретт Л., Хензи П.С., Митчелл Д. и др.Пластичность терморегуляции у свободноживущих верветок, Chlorocebus pygerythrus . J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol. 2014;184(6):799–809. doi:10.1007/s00360-014-0835-y.

Артикул Google Scholar

Фрибе А., Эванс А.Л., Арнемо Дж.М., Блан С., Брунберг С., Флейснер Г. и др. Факторы, влияющие на дату имплантации, родов и проникновения в берлогу, оцененные по активности и температуре тела бурых медведей на свободном выгуле.ПЛОС Один. 2014;9(7). doi:10.1371/journal.pone.0101410.

">

Грин Дж. А., Тантон Дж. Л., Вукс А. Дж., Бойд И. Л., Батлер П. Дж. Влияние долгосрочных имплантированных регистраторов данных на макаронных пингвинов Eudyptes chrysolophus . Дж. Авиан Биол. 2004;35(4):370–6. doi:10.1111/j.0908-8857.2004.03281.x.

Артикул Google Scholar

Eichhorn G, Groscolas R, Le Glaunec G, Parisel C, Arnold L, Medina P, et al. Гетеротермия у растущих королевских пингвинов.Нац коммун. 2011;2. дои: 10.1038/ncomms1436.

Беван Р.М., Бойд И.Л., Батлер П.Дж., Рейд К., Вукс А.Дж., Кроксолл Дж.П. Частота сердечных сокращений и температура брюшной полости свободно живущих южно-грузинских бакланов, Phalacrocorax georgianus . J Эксперт Биол. 1997; 200(4):661–75.

ПабМед Google Scholar

Батлер П.Дж., Беван Р.М., Вукс А.Дж., Кроксалл Д.П., Бойд И. Л. Использование регистраторов данных для определения энергетики и физиологии водоплавающих птиц и млекопитающих.Br J Med Biol Res. 1995; 28:1307–17.

КАС Google Scholar

Тойен О., Блейк Дж., Эдгар Д.М., Гран Д.А., Хеллер Х.К., Барнс Б.М. Спячка у черных медведей: независимость подавления метаболизма от температуры тела. Наука. 2011;331(6019):906–9. дои: 10.1126/наука.1199435.

ПабМед Статья КАС Google Scholar

Лонг Р.А., Хат Р.А., Барнс Б.М.Одновременный сбор данных о температуре тела и активности роющих млекопитающих: новый метод. Дж. Уайлдл Манаг. 2007;71(4):1375–139. дои: 10.2193/2006-399.

Артикул Google Scholar

Хилмер С., Алгар Д., Нек Д., Шлейхер Э. Дистанционное зондирование физиологических данных: влияние длительного содержания в неволе на изменение температуры тела дикой кошки ( Felis catus ) в Австралии, записано с помощью Thermochron iButtons. Дж Терм Биол.2010;35(5):205–10. doi: 10.1016/j.jtherbio.2010.05.002.

Артикул Google Scholar

Мустонен А.М., Асикайнен Дж., Каухала К., Паакконен Т., Ниеминен П. Сезонные ритмы температуры тела у свободноживущих енотовидных собак ( Nyctereutes procyonoides ) с особым акцентом на зимний сон. Хронобиол Инт. 2007;24(6):1095–107. дои: 10.1080/07420520701797999.

ПабМед Статья Google Scholar

Даусманн К.Х.Измерение температуры тела в полевых условиях — оценка внешних и имплантированных передатчиков у мелких млекопитающих. Дж Терм Биол. 2005;30(3):195–202. doi: 10.1016/j.jtherbio.2004.11.003.

Артикул Google Scholar

Cooper CE, Withers PC. Закономерности изменения температуры тела и оцепенения у намбатов Myrmecobius fasciatus (Marsupialia: Myrmecobiidae). Дж Терм Биол. 2004;29(6):277–84. doi: 10.1016/j.jtherbio.2004.05.003.

Артикул Google Scholar

Шмидт А., Алард Ф., Хандрич Ю. Изменения температуры тела королевских пингвинов в море: результат тонкой регулировки периферической потери тепла? Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2006; 291(3):R608–18. doi: 10.1152/ajpregu.00826.2005.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Ниидзума Ю., Габриэльсен Г.В., Сато К., Ватануки Ю., Найто Ю.Кайры Брунниха ( Uria lomvia ) поддерживают высокую температуру в ядре тела во время погружений. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 2007;147(2):438–44. doi:10.1016/j.cbpa.2007.01.014.

ПабМед Статья КАС Google Scholar

Gilbert C, Le Maho Y, Perret M, Ancel A. Изменения температуры тела, вызванные сбиванием в кучу у размножающихся самцов императорских пингвинов. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2007; 292(1):R176–85.doi:10.1152/ajpregu.00912.2005.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Николь С., Андерсен Н.А. Температура тела как показатель яйцекладки у ехидны Tachyglossus aculeatus . Дж Терм Биол. 2006;31(6):483–90. doi: 10.1016/j.jtherbio.2006.05.001.

Артикул Google Scholar

Warnecke L, Withers PC, Schleucher E, Maloney SK.Изменение температуры тела южных коричневых бандикутов Isoodon obesulus (Marsupialia: Peramelidae) на свободе и в неволе. Дж Терм Биол. 2007;32(2):72–7. doi: 10.1016/j.jtherbio.2006.10.003.

Артикул Google Scholar

Signer C, Ruf T, Schober F, Fluch G, Paumann T, Arnold W. Универсальная телеметрическая система для непрерывного измерения частоты сердечных сокращений, температуры тела и двигательной активности у диких жвачных животных. Методы Экол Эвол. 2010;1(1):75–85. doi:10.1111/j.2041-210X.2009.00010.x.

Центральный пабмед пабмед Статья Google Scholar

Хорнинг М., Хаулена М., Туоми П.А., Меллиш Дж.-А.Е. Внутрибрюшинная имплантация пожизненных передатчиков телеметрии у отариевых. BMC Vet Res. 2008;4. дои: 10.1186/1746-6148-4-51.

Адельман Дж.С., Кордова-Кордова С., Споэльстра К., Викельски М., Хау М. Радиотелеметрия выявляет различия в поведении лихорадки и болезни в зависимости от широты у свободноживущих воробьиных.Функция Экол. 2010;24(4):813–23. doi:10.1111/j.1365-2435.2010.01702.x.

Артикул Google Scholar

Kruuk H, Taylor PT, Mom GAT. Температура тела и поведение евразийской выдры при кормлении ( Lutra lutra ) в зависимости от температуры воды. Джей Зул. 1997; 241: 689–97.

Артикул Google Scholar

">

Брейн С, Митчелл Д. Изменения температуры тела у бабуинов ( Papio hamadryas ursinus ) в пустыне Намиб, Намибия.Int J Приматол. 1999;20(4):585–98. doi:10.1023/a:1020394824547.

Артикул Google Scholar

Крискуоло Ф., Готье-Клерк М., Ле Махо Ю., Габриэльсен Г.В. Температура выводкового пятна во время провокации инкубации обыкновенной гаги в Ню-Олесунне, Шпицберген. Полярный рез. 2001;20(1):115–8. doi:10.1111/j.1751-8369.2001.tb00044.x.

Артикул Google Scholar

Шмутц Я.А.Выживание взрослых краснозобых гагар ( Gavia stellate ) может быть связано с морскими условиями. Водоплавающие птицы. 2014;37:118–24.

Артикул Google Scholar

Thouzeau C, Peters G, Le Bohec C, Le Maho Y. Регулировка pH, подвижности и температуры желудка при длительном сохранении содержимого желудка у королевских пингвинов, насиживающих на свободном выгуле. J Эксперт Биол. 2004;207(15):2715–24. дои: 10.1242/jeb.01074.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Weissenboeck NM, Schober F, Fluch G, Weiss C, Paumann T, Schwarz C, et al.Многоразовые биотелеметрические капсулы: удобный и надежный метод измерения центральной температуры тела у крупных млекопитающих во время прохождения через кишечник. Дж Терм Биол. 2010;35(3):147–53. doi: 10.1016/j.jtherbio.2010.02.001.

Артикул Google Scholar

Wilson RP, Putz K, Gremillet D, Culik BM, Kierspel M, Regel J, et al. Достоверность изменений температуры желудка при определении характеристик питания морских птиц. J Эксперт Биол. 1995;198(5):1115–35.

ПабМед Google Scholar

Като А., Наито Ю., Ватануки Ю., Шонесси П.Д. Характер ныряния и температура желудка кормящихся королевских бакланов на субантарктическом острове Маккуори. Кондор. 1996; 98(4):844–8. дои: 10.2307/1369867.

Артикул Google Scholar

Kuhn CE, Costa DP. Идентификация и количественная оценка потребления добычи по изменению температуры желудка у ластоногих.J Эксперт Биол. 2006;209(22):4524–32. дои: 10.1242/jeb.02530.

ПабМед Статья Google Scholar

Хедд А., Гейлз Р., Ренуф Д. Можно ли использовать телеметрию температуры желудка для количественного определения потребления добычи тюленями? Повторное обследование. Полярная биол. 1996;16(4):261–70. doi: 10.1007/s003000050053.

Артикул Google Scholar

Wilson RP, Kierspel MAM. Метод извлечения заякоренных желудочных зондов у морских птиц.Mar Ecol Prog Сер. 1998; 163: 295–7. дои: 10.3354/мепс163295.

Артикул Google Scholar

">

Хайде-Йоргенсен М., Нильсен Н., Хансен Р., Блэквелл С. Температура желудка нарвалов ( Monodon monoceros ) во время кормления. Аним Биотелем. 2014;2(1):9.

Артикул Google Scholar

Handrich Y, Bevan RM, Charrassin JB, Butler PJ, Putz K, Woakes AJ, et al.Гипотермия у кормящихся королевских пингвинов. Природа. 1997;388(6637):64–7. дои: 10.1038/40392.

КАС Статья Google Scholar

Enstipp MR, Gremillet D, Jones DR. Приращение тепла при кормлении двуногих бакланов ( Phalacrocorax auritus ) и его потенциал для термического замещения. J Эксперт Биол. 2008;211(1):49–57. дои: 10.1242/jeb.012229.

ПабМед Статья Google Scholar

Шреер Дж. Ф., Лапьер Дж. Л., Хэммилл, Миссури.Телеметрия температуры желудка показывает, что детеныши обыкновенного тюленя ( Phoca vitulina ) питаются в основном в воде. Аква Мамм. 2010;36(3):270–7. doi: 10.1578/am.36.3.2010.270.

Артикул Google Scholar

Sauve CC, Van de Walle J, Hammill MO, Arnould JPY, Beauplet G. Записи температуры желудка показывают кормление грудью и переход на твердую пищу млекопитающего, не отнятого от груди, детеныша обыкновенного тюленя ( Phoca vitulina ).PLoS один. 2014;9(2). doi:10.1371/journal.pone.00

.

Reuter RR, Carroll JA, Hulbert LE, Dailey JW, Galyean ML. Техническое примечание: разработка автономного ректального датчика температуры для исследования крупного рогатого скота. J Anim Sci. 2010;88(10):3291–5. doi: 10.2527/jas.2010-3093.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Бердик Н.К., Кэрролл Дж.А., Дейли Дж.В., Рэндел Р.Д., Фалькенберг С.М., Шмидт Т.Б.Разработка автономного вагинального датчика температуры для использования в исследованиях крупного рогатого скота. Дж Терм Биол. 2012;37(4):339–43. doi: 10.1016/j.jtherbio.2011.10.007.

Артикул Google Scholar

Munn AJ, Barboza PS, Dehn J. Ощутимые потери тепла при кормлении овцебыками ( Ovibos moschatus ) зимой: маленькие телята не находятся в невыгодном положении по сравнению со взрослыми коровами. Физиол Биохим Зоол. 2009;82(5):455–67.дои: 10.1086/605400.

ПабМед Статья Google Scholar

Одет Д., Томас Д.В. Оценка точности измерения температуры тела с помощью внешних радиопередатчиков. Джан Джей Зул. 1996; 74 (9): 1778–81. дои: 10.1139/z96-196.

Артикул Google Scholar

Норд А., Хириак С., Хассельквист Д., Нильссон Дж-Е. Инъекция эндотоксина ослабляет гипотермию в фазе покоя у зимующих больших синиц за счет начала лихорадки.Функция Экол. 2013;27(1):236–44. дои: 10.1111/1365-2435.12003.

Артикул Google Scholar

Шоландер П.Ф., Хок Р., Уолтерс В., Джонсон Ф., Ирвинг Л. Терморегуляция у некоторых арктических и тропических млекопитающих и птиц. Биол Бык. 1950; 99 (2): 237–58.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Ларкомб А. Измерение температуры тела южного бурого бандикута ( Isoodon obesulus ) с использованием внутренних и внешних телеметров.JR Soc West Aust. 2007; Часть 90(3):161–3.

Google Scholar

Бонтер ДН, Бридж ЭС. Применение радиочастотной идентификации (RFID) в орнитологических исследованиях: обзор. Джей Филд Орнитол. 2011;82(1):1–10. doi:10.1111/j.1557-9263.2010.00302.x.

Артикул Google Scholar

">

Barclay RMR, Calcounis MC, Crampton LH, Stefan C, Vonhof MJ, Wilkinson L, et al.Можно ли использовать внешние радиопередатчики для оценки температуры тела и оцепенения у летучих мышей? J Млекопитающее. 1996;77:1102–6.

Артикул Google Scholar

Баккен Г.С., Рейнольдс П.С., Кеноу К.П., Коршген К.Е., Бойсен А.Ф. Терморегуляторные эффекты радиотелеметрических передатчиков на утят кряквы. Дж. Уайлдл Манаг. 1996;60(3):669–78.

Артикул Google Scholar

Вуарин П., Даммхан М., Генри П.Ю.Индивидуальная гибкость в энергосбережении: размер и состояние тела ограничивают использование оцепенения. Функция Экол. 2013;27(3):793–9. дои: 10.1111/1365-2435.12069.

Артикул Google Scholar

Бойд Ил. Температура кожи во время свободного плавания и ныряния у южных морских котиков. J Эксперт Биол. 2000; 203:1907–14.

КАС пабмед Google Scholar

Уиллис CKR, Бригам Р.М.Определение оцепенения у свободноживущих летучих мышей: экспериментальная оценка внешних термочувствительных радиопередатчиков и концепция активной температуры. J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol. 2003;173(5):379–89.

КАС Статья Google Scholar

Мюррей Д.Л., Фуллер М.Р. Критический обзор влияния маркировки на биологию позвоночных. Методы исследования в экологии животных: противоречия и последствия; 2000.

Kenward RE. Руководство по радиометкам диких животных. Лондон: Академическая пресса; 2001.

Google Scholar

Wilson RP, McMahon CR. Измерительные устройства на диких животных: что является приемлемой практикой? Фронт Экол Окружающая среда. 2006;4(3):147–54. doi:10.1890/1540-9295(2006)004[0147:mdowaw]2.0.co;2.

Маккафферти Д.Дж., Монкрифф Дж.Б., Тейлор И.Р., Бодди Г.Ф. Использование ИК-термографии для измерения радиационной температуры и тепловых потерь сипухи ( Tyto alba ).Дж Терм Биол. 1998;23(5):311–8.

Артикул Google Scholar

Weissenboeck NM, Weiss CM, Schwammer HM, Kratochvil H. Тепловые окна на поверхности тела африканских слонов ( Loxodonta africana ), изученные с помощью инфракрасной термографии. Дж Терм Биол. 2010;35(4):182–8. doi: 10.1016/j.jtherbio.2010.03.002.

Артикул Google Scholar

Амиэль Дж.Дж., Чуа Б., Вассерсуг Р.Дж., Джонс Д.Р.Температурно-зависимая регуляция распределения крови у змей. J Эксперт Биол. 2011;214(9):1458–62.

ПабМед Статья Google Scholar

">

Bakken GS, Van Sant MJ, Lynott AJ, Banta MR. Прогнозирование малых эндотермических температур тела по температуре кожи головы. Дж Терм Биол. 2005;30(3):221–8.

Артикул Google Scholar

Гило М., Шиндер Д., Яхав С.Температура поверхности кожи цыплят-бройлеров коррелирует с внутренней температурой тела и свидетельствует об их терморегуляторном статусе. Poult Sci. 2012;91(1):175–88. doi: 10.3382/ps.2011-01497.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Teunissen LPJ, Daanen HAM. Инфракрасная тепловизия внутреннего уголка глаза как средство оценки внутренней температуры тела. J Med Eng Technol. 2011;35(3–4):134–8. дои: 10.3109/03091902.2011.554595.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Стюарт М., Вебстер Дж., Веркерк Г., Шефер А. , Колин Дж., Стаффорд К. Неинвазивное измерение стресса у дойных коров с помощью инфракрасной термографии. Физиол Поведение. 2007;92(3):520–5. doi:10.1016/j.physbeh.2007.04.034.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Эдгар Дж. Л., Лоу Дж. К., Пол Э. С., Никол С. Дж.Материнская реакция птиц на дистресс цыплят. Proc R Soc B Biol Sci. 2011; 278(1721):3129–34. doi:10.1098/rspb.2010.2701.

КАС Статья Google Scholar

Маккафферти Д.Дж., Мосс С., Беннетт К., Помрой П.П. Факторы, влияющие на радиационную температуру поверхности детенышей серого тюленя ( Halichoerus grypus ) в период ранней и поздней лактации. J Comp Physiol B Biochem Syst Environ Physiol. 2005; 175 ((6): 423–31. doi: 10.1007/s00360-005-0004-4.

КАС Статья Google Scholar

">

Rowley JJL, Alford RA. Бесконтактные инфракрасные термометры позволяют точно измерять температуру тела земноводных. Herpetol Rev. 2007;38(3):308–11.

Google Scholar

Карретеро Массачусетс. Измерение температуры тела у мелких лацертид: инфракрасные и контактные термометры. Базовый Аппл Герпетол. 2012;26:99–105.

Google Scholar

Варнеке Л.Количественная оценка оцепенения у мелких млекопитающих неинвазивно с использованием инфракрасных термопар. Дж Терм Биол. 2012;37(5):380–3. doi: 10.1016/j.jtherbio.2012.02.002.

Артикул Google Scholar

Дэвидсон А.Дж., Ожар Ф., Лондон Б., Менакер М., Блок Г.Д. Thermochron iButtons: недорогой метод долгосрочной регистрации внутренней температуры тела у непривязанных животных. J Биол Ритмы. 2003;18(5):430–2. дои: 10.1177/0748730403256066.

ПабМед Статья Google Scholar

Розник Э.А., Алфорд Р.А.Влияет ли водонепроницаемость регистраторов данных Thermochron iButton на показания температуры? Дж Терм Биол. 2012;37(4):260–4. doi: 10.1016/j.jtherbio.2012.02.004.

Артикул Google Scholar

Williams JB, Tieleman BI, Shobrak M. Валидация термочувствительных радиопередатчиков для измерения температуры тела у мелких животных. Ардея. 2009;97(1):120–4.

Артикул Google Scholar

Шоландер П.Ф., Хок Р., Уолтерс В., Ирвинг Л.Адаптация к холоду у арктических и тропических млекопитающих и птиц в зависимости от температуры тела, теплоизоляции и скорости основного обмена. Биол Бык. 1950; 99 (2): 259–71.

КАС пабмед Статья Google Scholar

">

Бригам Р.М. Ежедневное оцепенение у бродячего козерога, обыкновенного бедняка ( Phalaenoptilus nuttallii ). Физиол Зоол. 1992;65(2):457–72. дои: 10.2307/30158263.

Артикул Google Scholar

Нидерманн Р., Висс Э., Аннахайм С., Псикута А., Дэйви С., Росси Р.М.Прогнозирование внутренней температуры тела человека с использованием неинвазивных методов измерения. Int J Biometeorol. 2014;58(1):7–15. doi: 10.1007/s00484-013-0687-2.

ПабМед Статья Google Scholar

Тейлор Э.Н., ДеНардо Д.Ф., Малави, Массачусетс. Сравнение точечного и полунепрерывного отбора проб для оценки температуры тела в свободно перемещающихся экзотермах. Дж Терм Биол. 2004;29(2):91–6. doi: 10.1016/j.jtherbio.2003.11.003.

Артикул Google Scholar

Аль-Халиди Ф. К., Саатчи Р., Берк Д., Элфик Х., Тан С.Методы контроля частоты дыхания: обзор. Педиатр Пульмонол. 2011;46(6):523–9. doi: 10.1002/ppul.21416.

КАС пабмед Статья Google Scholar

Betke M, Hirsh DE, Makris NC, McCracken GF, Procopio M, Hristov NI, et al. Тепловидение показывает значительно меньшие колонии бразильских свободнохвостых летучих мышей, чем предполагалось ранее. J Млекопитающее. 2008;89(1):18–24. doi: 10.1644/07-mamm-a-011.1.

Артикул Google Scholar

Кук С.Дж., Мидвуд Д.Д., Тим Д.Д., Климли П., Лукас М.С., Торстад Э.Б. и др.Отслеживание животных в пресной воде с помощью электронных меток: прошлое, настоящее и будущее. Аним Биотелем. 2013;1(5).

Никита К.С. Справочник по медицинской телеметрии. Хобокен: Уайли; 2014. Дои: 10.1002/9781118893715.

Б | СпрингерЛинк

Действия

') var buybox = document. querySelector("[data-id=id_"+ метка времени +"]").родительский узел ;[].slice.call(buybox.querySelectorAll(".вариант-покупки")).forEach(initCollapsibles) функция initCollapsibles(подписка, индекс) { var toggle = подписка.querySelector(".цена-варианта-покупки") подписка.classList.remove("расширенный") var form = подписка.querySelector(".форма-варианта-покупки") если (форма) { var formAction = форма.получить атрибут ("действие") form.setAttribute("действие", formAction.replace("/checkout", "/cart")) document.querySelector("#ecommerce-scripts").addEventListener("load", bindModal(form, formAction, timestamp, index), false) } var priceInfo = подписка.querySelector(".Информация о цене") var PurchaseOption = toggle. parentElement если (переключить && форма && priceInfo) { переключать.setAttribute("роль", "кнопка") toggle.setAttribute("tabindex", "0") toggle.addEventListener («щелчок», функция (событие) { var expand = toggle.getAttribute("aria-expanded") === "true" || ложный toggle.setAttribute("aria-expanded", !expanded) form.hidden = расширенный если (! расширено) { покупкаВариант.classList.add ("расширенный") } еще { покупкаOption.classList.remove("расширенный") } priceInfo.hidden = расширенный }, ложный) } } функция bindModal (форма, formAction, метка времени, индекс) { var weHasBrowserSupport = window. fetch && Array.from функция возврата () { var Buybox = EcommScripts ? EcommScripts.Ящик для покупок: ноль var Modal = EcommScripts ? EcommScripts.Modal : ноль if (weHasBrowserSupport && Buybox && Modal) { var modalID = "ecomm-modal_" + метка времени + "_" + индекс var modal = новый модальный (modalID) modal.domEl.addEventListener («закрыть», закрыть) функция закрыть () { форма.querySelector("кнопка[тип=отправить]").фокус() } форма.setAttribute( "действие", formAction.replace("/checkout", "/cart?messageOnly=1") ) form. addEventListener( "Отправить", Buybox.interceptFormSubmit( Буйбокс.fetchFormAction(окно.fetch), Buybox.triggerModalAfterAddToCartSuccess(модальный), консоль.лог, ), ложный ) document.body.appendChild(modal.domEl) } } } функция initKeyControls() { документ.addEventListener("keydown", функция (событие) { if (document.activeElement.classList.contains("цена-варианта-покупки") && (event.code === "Пробел" || event.code === "Enter")) { если (document.activeElement) { событие. preventDefault() документ.activeElement.click() } } }, ложный) } функция InitialStateOpen() { var buyboxWidth = buybox.смещениеШирина ;[].slice.call(buybox.querySelectorAll(".опция покупки")).forEach(функция (опция, индекс) { var toggle = option.querySelector(".цена-варианта-покупки") var form = option.querySelector(".форма-варианта-покупки") var priceInfo = option.querySelector(".Информация о цене") если (buyboxWidth > 480) { переключить.щелчок() } еще { если (индекс === 0) { переключать.щелчок() } еще { toggle. setAttribute («ария-расширенная», «ложь») form.hidden = "скрытый" priceInfo.hidden = "скрытый" } } }) } начальное состояниеОткрыть() если (window.buyboxInitialized) вернуть window.buyboxInitialized = истина initKeyControls() })()

Начало РС в детстве: отсрочивают ли лекарства, модифицирующие заболевание, длительную нетрудоспособность?

Шмирер К&запятая; Sørensen PS, Бейкер Д.
Высокоэффективная модифицирующая заболевание терапия в качестве начальной терапии рассеянного склероза
Curr Opin Neurol. 2021 июня 1;34(3)@286-294. doi&двоеточие; 10.1097/WCO.0000000000000937.
Резюме(внешняя ссылка)

Pfeuffer S, Рольфес L, Хакерт Дж, Кляйншниц K, Ruck T&запятая; Wiendl H, Клотц L, Кляйншниц C, Meuth SG&запятая; Пул R.
Эффективность и безопасность кладрибина при РС: Практический опыт двух центров высшего образования
Mult Scler. 2021 12 мая 13524585211012227. doi&двоеточие; 10.1177/13524585211012227. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

De Stefano N, Сормани MP, Джованнони Г, Раммохан К, Лейст T, Койл ПК&запятая; Dangond F&запятая; Келлер Б&запятая; Александри Н, Галазка А.
Анализ частоты и тяжести рецидивов у пациентов с рассеянным склерозом, получавших кладрибин в таблетках или плацебо&co; Расширенные исследования CLARITY и CLARITY
Mult Scler. 2021 10 мая 13524585211010294. doi&двоеточие; 10.1177/13524585211010294. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Oksbjerg NR, Nielsen SD, Блинкенберг М, мадьяри M, Селлебьерг Ф.
Терапия антителами против CD20 и риск инфекции у пациентов с демиелинизирующими заболеваниями
Mult Scler Relat Disord. 2021 1 мая 52.102988. doi&двоеточие; 10.1016/j.msard.2021.102988. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Iaffaldano P, Лучизано G, Butzkueven H, Хиллерт Дж, Гайд R&запятая; Кох-Хенриксен N, мадьяри M, Пеллегрини F, Спелман T, Sørensen PS, Вукусич S, Трояно М.
Раннее начало лечения задерживает нарастание длительной нетрудоспособности при РРРС: Результаты из сети BMSD
Mult Scler. 26 апреля 2021 г., 13524585211010128. doi&двоеточие; 10.1177/13524585211010128. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)

Cohan S, Тенсер T, Арндорфер S, Чжу X, Живкович М, Кумар Дж.
Непрямое сравнение лечения рецидивирующего рассеянного склероза озанимодом и терифлуномидом с поправкой на соответствие
Mult Scler Relat Disord. 2021 25 апреля, 52,102972. doi&двоеточие; 10. 1016/j.msard.2021.102972. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Centonze D, Фантоцци R, Буттари F, Гримальди ЛБМ&запятая; Тотаро R, Корея F&запятая; Марросу MG, Конфалоньери P, Коттон S, Трояно M, Зиполи В.
Многоцентровое интервенционное исследование IV фазы для оценки влияния на удовлетворенность пациентов колышек IFN Beta-1a (предварительно заполненная шприц-ручка) у пациентов с рецидивирующе-ремиттирующим рассеянным склерозом, неудовлетворенных другими инъекционными подкожными интерферонами (исследование PLATINUM)
Передний нейрол. 2021 22 апреля 12,637615. doi&двоеточие; 10.3389/fneur.2021.637615. электронная коллекция 2021.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Scotto R, Рея А&запятая; Буономо АР&запятая; Moccia M, Viceconte G, Пизано E, Zappulo E, Брешиа Морра V, Неевреи I.
Риск инвазивных грибковых инфекций среди пациентов, получающих модифицирующие заболевание препараты для лечения рассеянного склероза: всесторонний обзор
Экспертное мнение о безопасности наркотиков. 2021 21 апреля 1-12. doi&двоеточие; 10.1080/14740338.2021.1918673. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)

D'Amico E, Zanghi A, Калоджеро AE&запятая; Патти Ф.
Мужская фертильность у пациентов с рецидивирующе-ремиттирующим рассеянным склерозом, получавших натализумаб и окрелизумаб: Проспективное исследование случай-контроль
Mult Scler. 2021 19 апреля, 13524585211009208. doi&двоеточие; 10.1177/13524585211009208. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)

Liu Z, Ляо Q, Вэнь H&запятая; Чжан И.
Терапия, модифицирующая заболевание при рецидивирующем-ремиттирующем рассеянном склерозе: Систематический обзор и сетевой метаанализ
Autoimmun Rev. 2021 июня 20(6)@102826. doi&двоеточие; 10.1016/j.autrev.2021.102826. Epub 2021 18 апреля.
Резюме(внешняя ссылка)

Dwyer CM, Йокубайтис В.Г., Станкович J, Бейкер J, Хаартсен J, Butzkueven H, Картрайт A, Шуи Н&запятая; Fragoso YD&запятая; Рат Л, Скибина O, Фритюрница K, Дворецкий E, Коулман J, Макинтри Дж, Макдонелл R, Ван дер Уолт А.
Высокие показатели сероконверсии JCV в большой международной когорте пациентов, получавших натализумаб
Ther Adv Neurol Disord. 2021 16 апреля 14.1756286421998915. doi&двоеточие; 10.1177/1756286421998915. электронная коллекция 2021.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Hersh CM, Кизиер Б&запятая; де Мур C, Миллер ДМ&запятая; Кампаньоло D, Уильямс JR&запятая; Фицджеральд KC, Сюн К&запятая; МакГинли член парламента&запятая; Хайленд М, Рудик Р.А. &запятая; Зимсен Т, Кулинска I.
Влияние натализумаба на качество жизни в реальной когорте пациентов с рассеянным склерозом: Результаты MS PATHS
Mult Scler J Exp Transl Clin. 2021 15 апреля 7(2)@20552173211004634. doi&двоеточие; 10.1177/20552173211004634. eCollection 2021 апрель-июнь.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Signoriello E, Лус G, Бонавита S, Lanzillo R, Сакка F, Ланди D, Фрау J, Барончини D, Zaffaroni M, Maniscalco GT&запятая; Курти E, Сартори A, Цеппаруло S, Marfia GA&запятая; Николетти CG&запятая; каротинуто A, Нокити V, Калери Ф&запятая; Сормани MP, Синьори А.
Переход с секвестрации на анти-CD20-истощающую терапию: исходы активности заболевания во время вымывания и в первые 6 месяцев терапии окрелизумабом
Mult Scler. 2021 15 апреля 13524585211005657. doi&двоеточие; 10. 1177/13524585211005657. Онлайн перед печатью.
Сводка(внешняя ссылка)

Seery N, Шармин С&запятая; Ли В&запятая; Нгуен А.Л.&запятая; Мясо C, Атварс R, Тейлор Н&запятая; Туннелл K, Кэри Дж, Marriott MP, Buzzard KA, Roos I&запятая; Двайер C, Бейкер J, Тейлор Л&запятая; Spriggs K, Килпатрик TJ, Калинчик T, Мониф М.
Прогнозирование риска инфекции у пациентов с рассеянным склерозом, получающих окрелизумаб: ретроспективное когортное исследование
CNS Drugs. 2021 13.1-12 апреля. doi&двоеточие; 10.1007/s40263-021-00810-3. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст этой статьи (внешняя ссылка)

Cohan S, Кумар J, Арндорфер S, Чжу X, Живкович М, Тенсер Т.
Сравнительная эффективность и безопасность озанимода и диметилфумарата при рецидивирующем-ремиттирующем рассеянном склерозе с использованием непрямого сравнения с поправкой на соответствие
Препараты ЦНС. 2021 13 апреля. doi&двоеточие; 10.1007/s40263-021-00805-0. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Читать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Zanghì A, Галло А&запятая; Аволио C, Капуано R, Луккини М, Петракка М, Бонавита S, Lanzillo R, Ферраро D, Курти E, Букафуска М, Каллари G, Бароне S, Понтильо Г&запятая; Аббадесса G, Ди Франческантонио В, Синьорелло E, Лус G, Сола P, Гранелла F, Валентино П, Мирабелла М, Патти F, Д'Амико Э.
Стратегии выхода из терапии при лечении натализумабом RRMS с высоким риском прогрессирующей многоочаговой лейкоэнцефалопатии: многоцентровое сравнительное исследование
нейротерапевтических препаратов. 2021 12 апреля. doi&двоеточие; 10.1007/s13311-021-01037-2. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Bose G, Раш C, Аткинс ХЛ&запятая; Фридман MS.
Реальный одноцентровый анализ алемтузумаба и кладрибина на рассеянный склероз
Mult Scler Relat Disord. 2021 11 апреля 52,102945. doi&двоеточие; 10.1016/j.msard.2021.102945. Онлайн перед печатью.
Резюме(link is external)

Rolfes L, Пфойфер S, Хакерт Дж, Павлицкий M, Ruck T&запятая; Зондерманн W&запятая; Корсен М, Wiendl H, Meuth SG&запятая; Кляйншниц C, Пул R.
Кожные реакции у пациентов с рассеянным склерозом, получающих лечение кладрибином
Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2021 апр 9;8(3):e990. doi&двоеточие; 10.1212/NXI.0000000000000990. Печать 2021 мая.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Kremer IEH, Jongen PJ&запятая; Эверс SMAA&запятая; Hoogervorst ELJ&запятая; Verhagen WIM&запятая; Хилигсманн М.
Помощь пациенту в принятии решения, основанная на многокритериальном анализе принятия решения о лекарствах, модифицирующих болезнь, для лечения рассеянного склероза и толстой кишки. разработка прототипа
BMC Med Inform Decis Mak. 2021 9/21(1) апреля 123. doi&двоеточие; 10.1186/s12911-021-01479-w.
Резюме(внешняя ссылка)
Читать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Trojano M, Рамио-Торрента L, Гримальди ЛМ&запятая; Любецки C, Шипплинг S&запятая; Эванс KC, Рен Z&запятая; Муралидхаран К.К.&запятая; Ликата S, Гафсон А.Р.
Рандомизированное исследование режимов дозирования натализумаба при рецидивирующем-ремиттирующем рассеянном склерозе
Mult Scler. 2021 6 апреля 13524585211003020. doi&двоеточие; 10.1177/13524585211003020. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Zhang Y, Солтер А&запятая; Джин S&запятая; Калпеппер WJ 2&запятая; Резак GR&запятая; Валлин М, Стьюв О.
Схемы назначений модифицирующей заболевание терапии у людей с рассеянным склерозом в зависимости от возраста
Ther Adv Neurol Disord. 2021 31 марта; 14.17562864211006499. doi&двоеточие; 10.1177/17562864211006499. электронная коллекция 2021.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Riancho J, Сетьен С, Санчес де ла Торре JR, Торрес-Баркен М, Misiego M, Перес JL, Кастильо-Тривиньо T, Менендес-Гарсия С, Дельгадо-Альварадо М.
Сохраняет ли увеличенный интервал дозирования натализумаба эффективность при рассеянном склерозе? 7-летнее ретроспективное обсервационное исследование
Front Immunol. 2021 25 марта; 12.614715. doi&двоеточие; 10.3389/fimmu.2021.614715. электронная коллекция 2021.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Pantazou V, Горшок C&запятая; Дю Паскье R, Ле Гофф G, Теоден М.
Рецидив активности заболевания после отмены финголимода у пожилых пациентов, ранее стабилизировавшихся на фоне лечения
Mult Scler Relat Disord. 2021 21 марта 51:102918. doi&двоеточие; 10.1016/j.msard.2021.102918. Онлайн перед печатью.
Резюме(внешняя ссылка)

Hillert J, мадьяри M, Soelberg Sørensen P, Butzkueven H, Ван Дер Вельт A, Вукусич S, Трояно M, Яффальдано P, Пеллегрини F, Гайд R&запятая; Stawiarz L, Манучериния А, Спелман Т.
Переключение и прекращение лечения в течение 20 лет в большой сети передачи данных по рассеянному склерозу
Front Neurol. 2021 17 марта 12,647811. doi&двоеточие; 10.3389/fneur.2021.647811. электронная коллекция 2021.
Резюме(внешняя ссылка)
Прочитать полный текст статьи (внешняя ссылка)

Tallantyre EC, Замок D, Карамура P, Брайс TAW&запятая; Джозеф Ф, Harding KE&запятая; Робертсон Н.П.
Приемлемость и применение терапии, модифицирующей болезнь, при первично-прогрессирующем рассеянном склерозе в когорте Великобритании
Mult Scler Relat Disord.