Перейти к содержимому

Болезни петушков фото и их лечение фото: Рыбка петушок: болезни и лечение

Содержание

Рыбка петушок: болезни и лечение

Петушки ценятся аквариумистами за изящные формы, грациозные движения, яркие расцветки. Вид прихотливый – несоблюдение правил содержания приводит к негативным последствиям. Знания про болезни и лечение рыбки петушок позволяют избежать возникновения заболеваний, быстро выявить причину и сохранить питомцев.

Виды болезней и причины возникновения

Петушки подвержены широкому спектру заболеваний, вызываемыми неблагоприятными условиями содержания, микроорганизмами, грибками. Лечение рыбки петушка выбирается исходя из симптомов. Распространенные болезни:

  • Плавниковая гниль – хвост и плавники покрываются слизью, постепенно разрушаются из-за вредоносной бактерии.

  • Экзофтальмия – глаза вылезают из орбит. Причины – заражение бактериями, паразитами, недостаток витаминов.

  • Костиоз – появляется слизь на коже, жабрах. Вызывается жгутиковым паразитом.

  • Колумнариоз – жабры темнеют, рот покрывается белым налетом, возникает пучеглазие, плавники слипаются и распадаются. Бактериальная инфекция.

  • Водянка – брюшко вздувается из-за излишков жидкости, взъерошивается чешуя, видны кровоподтеки, покраснения. Возникает из-за нарушения обмена веществ, инфекций, паразитов.

  • Ихтиофтириоз – тело покрывается крупяной сыпью, напоминающей манку. Вызывается простейшими – инфузориями.

  • Оодиниоз – прерывистые движение, склеивание плавников, отслоение чешуи. Поражение жгутиковым паразитом.

Лечение рыбок петушков следует производить незамедлительно при выявлении симптомов. Все заболевания опасны, если с ними бороться.

Химические препараты

Выявление болезни рыбок петушков и их лечение усложняется схожестью симптомов. Рекомендуемые препараты для лечения рыбок:

  • Витамины, микроэлементы – содержатся в качественных кормах, добавках. Усиливают иммунитет, позволяя организму самостоятельно противостоять инфекции.
  • Противогрибковые – Акваконс Против Грибков, АВ3, Метиленовый синий, Сульфат меди, TetraMedica FungiStop.
  • Антибактериальные – АВ3, TetraMedica FungiStop, Трипафлавин-Ультра.
  • Противопаразитарные – Малахитовый зеленый, АВ3, Ихтиофор, TetraMedica ContraIck.
  • Ванны из поваренной или морской соли на 15-30 минут, 10 грамм на литр воды, температура 30 градусов – лечатся паразитарные, грибковые болезни.
  • Стрептоцид 1,5 грамма на литр – против бактерий.

Сомневаясь в диагнозе, используйте комплексное лечение рыбок петушков – витамины и препараты широкого спектра.

Профилактические меры

Болезнь легче предотвратить, чем вылечить. Способы профилактики:

Рекомендуется заблаговременно запастись лекарственными средствами – покупайте препараты ведущих производителей с подробными инструкциями применения в магазине «12 обезьян».


Болезни рыбок-петушков и способы лечения заболеваний

Аквариумные петушки требуют тщательного ухода и соблюдения правил содержания. Иначе рыбки могут заболеть или умереть.

О том, каким заболеваниям подвержены петушки, как распознать и лечить плавниковую гниль, вельветовую болезнь расскажет Prostozoo.

Если вы заметили, что с вашими рыбками что-то не так, обратите внимание на симптомы:

  • симптомы возникли внезапно, они одинаковы и распространись на большинство рыб – проблема в качестве воды. Действия: провести тесты на аммиак/аммоний, нитраты и нитриты, водородный показатель, срочно сменить воду;
  • симптомы проявляются постепенно, медленно распространяясь на всех рыб или на представителей одного вида – инфекционное заболевание. Действия: зараженную рыбу или рыб пересадить в карантинный аквариум, провести общий осмотр, изучить все симптомы (внешний вид, поведение, аппетит), установить диагноз;
  • странное поведение одной или нескольких рыб, больше похожее на недомогание, внешних признаков и изменений нет, на других рыб не распространяется – причины могут быть самые разнообразные. Действия: подозрительного петушка отсадить в карантинный аквариум, продолжить наблюдения за ним.
Плавниковая гниль

Больше всего петушки подвержены бактериальному заболеванию плавников – плавниковой гнили. Причиной этого заболевания могут быть различные бактерии, а последствия одинаковые – разрушение плавников.

Симптомы заболевания: нежно-голубое помутнение плавников, склеенность, белое окаймление, белые язвы у основания, разрушение плавников, редко – помутнение роговицы.

Основная причина заболевания – плохой уход за аквариумом:

  • перенаселение аквариума;
  • редкая или недостаточная замена воды;
  • отсутствие или недостаточная сифонка грунта;
  • недостаточно мощный или редко чистящийся фильтр;
  • подселение рыбок, не прошедших карантин, или переселение рыбок в другой аквариум.

Однако бывает так, что даже в самом идеальном аквариуме петушки заболевают плавниковой гнилью. Так происходит потому, что инфекция есть везде, все зависит от того, насколько окружающая среда благоприятна для ее развития. Для лечения рыбок в данном случае используйте антигрибковые и антибактериальные препараты широкого спектра действия. Они позволят в кратчайшие сроки подавить бактериальную активность, после чего можно будет лечить рыбок от последствий заболевания. Для этого лучше всего подойдут Sera Baktopur, малахитовый зеленый, Антибак, а также Основной фиолетовый «К», Ampicillex или Neosulfex от фирмы Aquatronics и TetraMedica FungyStop.

Источник фото: http://petushok.info

Ихтиофтириоз, или «манная крупа»

Свое первое название ихтиофтириоз получил от паразита – инфузории-ихтиофтириуса, а второе – из-за белых узелков, покрывающих тело зараженной рыбы, похожих на манную крупу. Эту болезнь можно сравнить с человеческим гриппом – вылечить ее с каждым годом становится все труднее, потому как новые штаммы становятся более устойчивыми к старым методам лечения. И если раньше достаточно было просто нагреть воду в аквариуме до 30-35 0С, чтобы вылечить рыбок, то современный «азиатский ихтик», довольно успешно сопротивляется существующим лекарствам.

Главный признак заражения – «манная крупа», которая сначала появляется в районе головы и передних плавников, после чего густо распространяется по всему телу. Рыбы становятся вялыми, трутся о грунт, плохо едят, вздрагивают и плавают толчками.

Основные причины возникновения ихтиофтириоза:

  • плохое гигиеническое состояние аквариума;
  • перенаселение;
  • перекорм петушков;
  • новые рыбки или растения, не прошедшие карантин;
  • переохлаждение.

Для лечения ихтиофтириоза используют: морскую или поваренную соль, малахитовый зелёный, метиленовую синь, Антипар, Sera Costapur, Sera Costa®Med F, а также бициллин-5 или трипафлавин. Параллельно с этим необходимо нагреть воду до максимально доступной для петушков температуры – свыше 30 градусов, но обязательно следите, чтобы не было перегрева, рыбкам и так будет тяжело бороться с болезнью. Температуру необходимо поддерживать до тех пор, пока не исчезнет «манка», и после этого еще 3-5 дней для профилактики.

Однако обратите внимание, что лечение и прогревание воды не решит проблему окончательно, необходимо соблюдать правила содержания и ухода за петушками.

Оодиниоз, или «вельветовая болезнь»

Причиной болезни является паразит жгутиконосец – оодинум. Основная причина болезни – низкая температура воды, не прошедшие карантин водоросли или новая рыба, плохой уход за аквариумом.

При заболевании тело и плавники петушка покрываются по краям мелкими узелками золотистого или серого цвета, похожими на мучнистую сыпь, за что болезнь и получила второе название – «вельветовая». Через некоторое время чешуя и даже кожа начинают отслаиваться, а плавники – склеиваются и расщепляются. Заразившаяся рыба начинает тереться о камни и плавает толчками. При сильном заражении болезнь протекает очень быстро, рыба еле дышит, отказывается от корма, практически не двигается. Иногда оодиниоз путают с ихтиофтириозом, однако различают эти болезни именно по цвету сыпи и по некоторым второстепенным симптомам.

Для лечения заболевших рыб (а лечить необходимо сразу всех, даже если сыпь только у одной) отсаживают в карантинный аквариум, а в основном подогревают температуру, чтобы уничтожить всех активных паразитов. Для лечения рыбок можно использовать Sera omnipur, Sera oodinopur, JBL Oodinol, Tetra Medika General Tonic, Ихтиофор, Формамед или Антипар.

Источник фото: http://mafia-betta-splendens.taba.ru

На нашем сайте вы можете сравнить стоимость услуг чистки и обслуживания морских и пресноводных аквариумов.

Болезни рыбки петушка, рыбка петушок от BettaSplendens

 

 

 

 Часто встречающиеся болезни рыбки Петушка и их лечение.

       В Тайланде и Сингапуре вследствие тропического климата в период сезонных дождей, рыбки петушки, выращенные на «фермах» страдают от болезней из-за снижения качества воды.
 Одно из распространённых заболеваний рыбки «Петушка» -  гексаметоз . Это внутренние свободно живущие одноклеточные паразиты (Spironucleus, Hexamita, «Ямчатая болезнь»). Этот паразит имеет микроскопические размеры (6-12 мкм) и живет в кишечнике и внутренних органах рыб.

 

   Spironucleus в основном встречается у декаротивных рыб (боций, лабиринтовых рыб, цихлид и т.д. Как правило, этот паразит поражает задний отдел кишечника, но на прогрессирующей стадии может быть обнаружен и в других органах (желчный пузырь, брюшная полость). Spironucleusтравмирует кишечник, вследствие чего может возникнуть вторичная бактериальная инфекция.Заражение этим видом паразитов может привести к массовой гибели ваших аквариумных любимцев.

 Рассматривая этих паразитов в фекалиях рыб под микроскопом, вы увидите чрезвычайно подвижные и быстро плавающие микроорганизмы. Их размеры максимально приближены к размеру сперматозоида рыб, поэтому, проводя микроскопическое исследование  фекалий  Петушков-самцов, будьте внимательны и не перепутайте паразита со сперматозоидом.


    Клиническая картина заболевания: Так как кишечник, раздраженный паразитами вырабатывает избыточную слизь, вследствие фекалии свисают из ануса в виде длинной белой нитки. Рыбка становится истощенной (большая голова и худое тело с впавшим брюшком), окрас рыбки темнеет, наблюдается отсутствие аппетита. В  70%  случаев, это заболевание не проявляет себя внешними факторами в начальной форме, и молодые особи будут погибать от массивного инфицирования. О наличии этого заболевания будут говорить только их поведение и избыточная слизь в экскрементах. Spironucleus часто ассоциируют с Ямчатой болезнью (повреждение органов боковой линии – при микроскопическом исследовании соскоба возле «дырок» видны паразиты Spironucleus, но  нет никаких доказательств того, что синдром «дырки в голове» - это результат патогенного воздействия данного возбудителя.

Лечение: В своей практике, при лечении этой болезни рыбок петушков, полученных из Тайланда и Сингапура, мы применяем  Метранидазол и повышаем температуру до 30-33 градусов Цельсия. Метронидазол мы добавляем как в воду так и в корм рыбке «Петушку».  В случае, если метронидазол и повышение температуры не дали ожидаемых результатов, мы прибегаем к альтернативному лечению с применением иных лекарственных препаратов.

   Внимание! Ямчатая болезнь не всегда является заражением Spironucleus, как, в свою очередь, и Spironucleus не всегда приводит к возникновению дыр. Оба заболевания имеют одну и ту же этиологию – стресс, плохое качество воды, голодание, бактериальная инфекция.

 

    Далее мы расскажем Вам об инфекции в тропических тепловодных аквариумах, которые могут привести к массовой гибели рыбок. Рыбка «Петушок», проделав до нас долгий путь - 5, а то и 7 суток, находясь без еды и подмены воды, получает стресс. Это снижает иммунитет рыбки петушка до предела и способствует заражению  инкапсулированными одноклеточными паразитами, которые вызывают Ихтиофтириоз (Белоточечная болезнь или «манка») и Piscinoodinium (Oodinium– Бархатная болезнь).

    Ихтиофтириоз (Белоточечная болезнь или «манка») – данное заболевание невозможно распознать на ранней стадии невооруженным глазом. Одноклеточный паразит находится под кожей (чешуей, на жабрах) и покрыт слизью, которая защищает его от медикаментозного лечения. Данную болезнь рыбки петушка можно побороть только, когда особи – бродяжки (до 1000 особей в цисте) свободно перемещаются в воде.  Наши рыбки «Петушки» нуждаются в температуре 25-27 градусов, что соответствует тропическому климату, где цикл развития данного паразита длится от 3 до 7 дней (в холодноводных аквариумах он может длиться в 2 или 3 раза дольше). На зрелой стадии Ихтиофтириоза появляются молодые особи (особи-бродяжки). Они отправляются на поиски новых «хозяев»-рыб.

    Клиническая картина заболевания:  На ранней стадии заражения у рыбок появляется всего несколько неспецифических симптомов – это сжатые плавники, несколько царапин и учащенное дыхание.  На прогрессирующей стадии заболевания на теле и плавниках рыбки появляется множество белых точек.

Рыбка, задыхаясь, держится у поверхности воды или лежат на дне. На коже и жабрах рыбки «Петушка» появляются слизистые нити, плавники рвутся. Так же может присоединиться вторичная бактериальная инфекция с плавниковой гнилью.

   Лечение: В своей практике в качестве лекарственного средства  мы применяем препарат «Антипар» и повышение температуры воды до 32 градусов Цельсия.

 

   В некоторых случаях возможно только повышение температуры до 32 градусов Цельсия без медикаментозного лечения (в случае тропического ихтиофтириоза этот метод малоэффективен). Внимание! Очень важно несколько раз в день подменивать воду, дабы уменьшить количество цист, отсоединившихся  от рыбки Петушка. В противном случае, они снова прикрепятся к рыбке.

 

  Piscinoodinium (Oodinium– старое название этого заболевания или Бархатная болезнь). В нашем случае, в аквариуме с рыбкой «Петушок» (в тропическом аквариуме) этот паразит прикрепляется к коже и жабрам и находится в неподвижном состоянии от 3 до 6 дней (в холодноводном аквариуме - от 10 до 12 дней).

В дальнейшем, паразит открепляется от «хозяина»-рыбы, превращается в цисту, в которой формирует примерно 250 спор. Споры, покинув цисту, отправляются на поиски новых «хозяев»-рыб. Если в течение 48 часов спора не находит себе «хозяина», она погибает. Данное заболевание необходимо незамедлительно лечить при обнаружении, так как за 2-3 дня может быть инфицирован весь аквариум и рыбки погибнут, если не принять срочных мер.

Клиническая картина заболевания:  На рыбке наблюдается мукообразный малет – эта бархатиская мутность кожи хорошо различима лишь под определённым углом. У рыбки сжаты плавники, она почесывается о камни, задыхается, наблюдаются очаги избыточной слизи, нервозность. Рыбы теряют аппетит, становятся вялыми, истощаются и, как итог, погибают.

Лечение: в своей практике мы применяем сульфат меди. 

Если рыбка Петушок взрослая (более 2 лет), мы применяем щадящее медикаментозное лечение.

Существует более сотни болезней рыбки Петушка. В ближайшее время в нашем офисе откроется отдел ихтиопатологии -  услуга по исследованию болезни рыбки Петушка и ее лечению.   Вы сможете написать нам на почту, описав заболевание, прислать фото и видео Вашей заболевшей рыбки Петушок, привести своего любимца для микроскопического исследования. Вашему Петушку  будет назначено корректное лечение, выданы лекарственные препараты. Так же, мы сможем принять Вашу рыбку Петушка в своем офисе на стационарное лечение. Услуга платная.

Болезни бойцовых рыбок Бетта (Петушков)

Бойцовым рыбкам характерны те же заболевания, что и другим аквариумным рыбкам. Однако, ввиду особого строения плавников, некоторые болезни встречаются у Петушков горазд чаще. К тому же, искусственно выведенные виды считаются более уязвимыми к различного рода инфекциям из-за подавленного иммунитета.

Ниже приведены наиболее распространённые болезни Петушков.

Плавниковая гниль

Главная причина популярности Бойцовых рыбок — это их красивые большие плавники, но они же являются их ахиллесовой пятой. Любое повреждение плавников/хвоста в следствие агрессии других рыб или травмы о предметы оформления может спровоцировать это заболевание. Особенно велики риски, если качество воды оставляет желать лучшего или рыбка содержится в неподходящих гидрохимических условиях.
Симптомы плавниковой гнили: кончики плавников меняют цвет, со временем могут опадать/разрушаться.


Ихтиофтириоз

Типичная болезнь большинства видов аквариумных рыб, в том числе и Бойцовых рыбок. Она чрезвычайно заразна, но не представляет серьёзной угрозы для здоровья и легко поддаётся лечению.
Диагностируется просто — по телу и плавниках рыбы появляются белесые точки. Они возникают вследствие жизнедеятельности простейших микроорганизмов (паразитов), которые поселяются на внешних покровах. Для лечения ихтиофтириоза используют специальные лекарственные препараты. Излечение происходит за несколько дней.


Пучеглазие

Как становится понятно из названия, болезнь сопровождается значительным увеличением глаз у рыб. В этом случае говорят, что глаза «вышли из орбит». Заболевание опасно своими последствиями, рыбка может лишиться зрения или даже погибнуть от вторичного заражения патогенными бактериями и микроорганизмами.
Главная причина этой болезни — неподходящие условия содержания или травма глаза, например, после схватки между самцами. Многие разновидности Бойцовых рыбок весьма требовательны к качеству воды и будут себя комфортно чувствовать в очень незначительном диапазоне значений pH и dGH. Именно поэтому пучеглазие весьма распространено среди декоративных рыбок Бетта.
Данное заболевание проще предотвратить, чем лечить.


Туберкулез

Туберкулёзу наиболее подвержены лабиринтовые рыбки, к которым и относится Петушок. Болезнь сложно диагностируется, но даже если её удастся установить, то лечения не существует. Наиболее гуманный вариант — это эвтаназия.


Бактериальные инфекции

Различного рода болезнетворные бактерии присутствуют повсеместно, в том числе и в аквариуме. Избавиться от них невозможно, они являются неотъемлемой частью окружающей среды. Пока рыба здорова, её иммунитет прекрасно справляется с ними. Таким образом, бактериальные инфекции, как правило, всего лишь следствие какого-либо расстройства или травмы.
В большинстве случаев, излечение происходит само собой, если рыбки начинают содержаться в благоприятных условиях и получают качественный корм, богатый витаминами и микроэлементами. В более запущенных случаях, потребуется медикаментозное лечение. К счастью бактериальные инфекции легко диагностируются и поддаются лечению антибактериальными средствами.

Похожие статьи

Как определить возраст Петушков (Бойцовой рыбки Бетта)
Группы/классификация бойцовых рыбок Бетта (Петушков)
Что такое Сиамская бойцовая рыбка Бетта (Петушок). История развития вида
Виды бойцовых рыбок (Петушков)

почему гниют бутоны и желтеют листья? Мухи на цветах и борьба с ними. Что делать, если загнивают ирисы и чем их обработать?

Ирисы – живописные яркие цветы, способные стать главным украшением сада. И хотя это довольно устойчивые к болезням и вредителям растения, но при неграмотном уходе и их эта проблема не обходит стороной. Важно своевременно выявить заболевание, чтобы успеть спасти цветок и соседние посадки. Рассмотрим подробнее распространенные болезни ирисов и способы борьбы.

Причины и признаки поражения

Недуги представителей флоры могут проявляться по-разному. Иногда причиной становится не конкретное заболевание, а ошибки в уходе. Например, отсутствие цветения может указывать на то, что цветок посажен слишком глубоко и корневой шейке не хватает солнца. В этом случае гибель не наступит, но и обильного цветения садовод может не ждать. Может быть и так, что цветки появились, но не распускаются. Причиной подобного «поведения» может быть дефицит солнечного света – такое бывает, если ирисы посажены на слишком затененных участках. На цветение повлияет и аккуратность самого садовода. Например, при случайном повреждении корней во время пересадки растение будет плохо поглощать влагу, что негативно скажется на развитии новых ростков.

Если у культуры гниют бутоны, желтеет и сохнет листва, цветки быстро вянут, наблюдается образование различных пятен, то, вероятно, причинами являются уже настоящие заболевания, садовод должен немедленно приступить к решению проблемы, чтобы спасти цветок.

Факторами вновь могут послужить неправильные условия выращивания. Так, гнилостные процессы чаще всего вызваны переувлажнением почвы и кучностью посадок. А также к таким болезням может приводить дефицит кальция и фосфора или излишек азота.

Заболевания и способы борьбы с ними

Выделяют несколько наиболее распространенных болезней представленной культуры.

  • Альтернариоз. Заметить этот грибок можно по осадку черного цвета на листьях. Они постепенно сохнут и облетают. Чтобы избежать появления этого недуга, рекомендуется обрабатывать растения бордоской смесью до и после цветения. Если экземпляр уже поражен болезнью, то его нужно ликвидировать, чтобы не пошло заражение на соседние цветы.
  • Аскохитоз. Еще один грибок, который можно отличить по коричневым пятнам, возникающим на краях листовой пластины. Чем больше развивается заболевание, тем скорее листья высохнут. Лечить культуру от данного вида заболевания можно средствами, содержащими медь. А также имейте в виду, что грибок может оставаться и в почве.
  • Гетероспориоз. Чаще всего растения болеют во второй половине лета. К заболеванию приводит теплая и влажная погода. При недуге на старой листве наблюдаются беловато-серые вкрапления с водянистым краем. Постепенно их окружность увеличивается, листья умирают, после чего инфекция переходит на внутренние листья.

Для борьбы можно делать обработки фунгицидами с медью и цинком, вовремя устранять старые высохшие листья.

  • Мозаика. Эта болезнь распространяется тлей. Судить о наличии заболевания можно по линиям и пятнам на листовой пластине. Методов лечения пока нет, но для предупреждения болезни следует проводить профилактику. Она заключается в грамотной агротехнике, своевременной борьбе с вредителями, ликвидации пораженных растений.
  • Ржавчина. Если листья покрылись бурыми и рыжими пустулами, а ткань вокруг них начинает отмирать, то цветок поражен ржавчиной. Постепенно листья вянут, скручиваются и погибают, наблюдается деформация стеблей. При лечении все пораженные растительные фрагменты уничтожаются, а остальные растения опрыскиваются раствором с серой, пока все признаки недуга не исчезнут. В качестве профилактики важно соблюдать культурооборот и выполнять качественный дренаж грунта.
  • Бактериоз. Это гнилостное поражение заметно уже весной. Узнать его можно по бурым пятнам на листьях. Со временем поврежденная листва отмирает. А также симптомом бактериоза является неприятный запах от стеблей. Внутренние корни при этом превращаются в белую зловонную субстанцию.

Зараженные ткани нужно срезать, а участки среза сбрызнуть марганцовкой. Срезанные фрагменты важно уничтожать.

  • Серая гниль. Это заболевание вызвано грибами, которые развиваются при высокой увлажненности. В некоторых случаях заметно, как гниют кончики листьев и стебли, а на их поверхности образуется серый осадок. Иногда болезнь поражает корни и приводит к сухой гнили. В качестве профилактики рекомендована посадка в хорошо дренированной почве. При лечении важно вовремя устранить все пораженные части и сжечь их.
  • Фузариоз. Это та самая сухая гниль, о которой упоминалось выше. Ее жертвой становится корневая система. Под воздействием болезни корешки загнивают, вместе с ними сохнут листья и вянут цветки. Уничтоженные недугом образцы нужно ликвидировать, а оставшиеся после них участки обработать хлорокисью меди. Здоровые соседние экземпляры требуется защитить от заражения фунгицидом.

Какие бывают паразиты и как с ними бороться?

Различные насекомые могут не только самостоятельно уничтожить цветы, но и перенести на себе серьезные заболевания с других растений, поэтому борьбу с вредителями также важно не откладывать. Некоторые насекомые чаще всего поражают ирисы.

Бобовая тля

Эта особь обитает на листьях, побегах и в бутонах. Она любит лакомиться соком цветочных культур, вследствие чего форма побегов видоизменяется, листья скручиваются, их окраска утрачивается. Само по себе насекомое выглядит как жучок бурого или черно-зеленого цвета.

В осенний период самка откладывает яйца на прикорневую часть, а весной из них проклевываются личинки, которые размножают следующие поколения. За один вегетационный период возможно развитие десяти поколений.

Чтобы предотвратить появление тли, нужно тщательно пропалывать цветы, а также подкармливать растения удобрениями с содержанием фосфора и калия. Заметив единичных особей, можно удалить их механически. Если цветок атаковали целые полчища насекомых, то нужно обработать экземпляры специальными настоями или отварами инсектицидов. А также для борьбы с этим вредителем подойдут препараты «Арриво», «Каратэ», «Командор», «Конфидор», «Искра».

Луковый клещ

Это насекомое выглядит как жучок с коричневым почти круглым туловищем, его размер не более 1 мм. Он предпочитает питаться луковичными растениями. Причина появления клеща может крыться в неправильном хранении посадочного материала. Если во время хранения вредитель поразил луковицы, то вполне вероятно его занесение и на клумбу. А также он любит селиться на образцах, которые до него облюбовали другие насекомые.

Для предупреждения появления этого существа рекомендуется предварительно вымочить посадочный материал в течение получаса в растворе «Антиклещ». Некоторые садоводы советуют перемешать луковицы с мелом.

А также защитить культуру от этих жуков поможет рядом высаженная морковь – она отпугнет клеща. Прежде чем отправить собранные луковицы на хранение, важно тщательно просушить их в течение недели. Предотвратит появление клеща и обработка места хранения посадочного материала серными шашками «Климат» или ФАС в течение двух суток.

Луковая нематода

Луковая нематода выглядит как червяк белого окраса длиной до 1,5 мм. Он предпочитает селиться в семенах и луковицах, размножается под воздействием повышенной влажности грунта. Он может на протяжении нескольких лет жить в засуху. Эти гусеницы высасывают из растения сок. Как только цветок погибает, особь закапывается в землю и начинает поиски свежего экземпляра.

На поражение нематодой указывают образцы растений, которые плохо развиваются в рост, имеют вздутые стебли и некрасивые цветки.

Чтобы предотвратить нападение этих червей, важно грамотно соблюдать севооборот, а также не высаживать цветы на те же клумбы в течение нескольких лет. В борьбе с вредителем вновь поможет соседняя высадка моркови. А также рекомендуется перед посадкой ирисов обработать хранилище серными шашками, хорошо обсушить посадочный материал и прогреть его при температуре +34–+37 градусов в течение семи суток. Рекомендуемая влажность при хранении – не выше 70%.

Ирисовая муха

Один из главных врагов представленной культуры. С виду это обычная муха серо-черного цвета. Взрослые особи и личинки заползают в бутоны и лакомятся их лепестками. Избавиться от этого вредителя помогут химические препараты, которые используются сразу после появления цветоноса. Кроме того, не лишней мерой будет и обработка земли под растениями.

Наиболее популярные средства борьбы – «Актара», «Актеллик», «Би-58», «Децис». Все пораженные экземпляры нужно сжигать.

Существуют и народные способы избавления от мухи. Например, можно до выхода цветковых стрелок обработать поврежденные культуры древесной золой, табачной пылью, горчицей, раствором горьких трав, мыльным раствором на спирте.

Трипсы

Эти мелкие создания с узкими крыльями и длинной бахромой по краям любят селиться в пазухах листьев. Их пища – клеточный сок. Чем быстрее размножаются трипсы, тем скорее листья покрываются бурыми разводами, а затем полностью засыхают. Пятна образуются и на корнях. Бороться с трипсами можно 10-процентной эмульсией карбофоса. 90 г средства разводят в 10 л воды и обрабатывают цветы раз в неделю.

Совки

Эта гусеница проникает внутрь стебля и выгрызает его содержимое. Чтобы избежать нашествия этих вредителей, важно регулярно рыхлить почву и избегать зарастания клумбы сорняками. Избавиться от насекомого помогает бордоская жидкость. Обрабатывать средством растения допускается только до начала цветения. Если садовод пропустил указанное время, то можно заменить смесь чемерицей Лобеля.

Профилактика

Как уже было сказано, важнейшей профилактической мерой является соблюдение правил агрономии. Важно предварительно осматривать все луковицы, поврежденные экземпляры необходимо уничтожать, хранить посадочный материал требуется в сухом прохладном месте и при необходимости перед посадкой обеззараживать его. Чтобы не завелись насекомые и не атаковали болезни, участок, куда высаживаются ирисы, должен иметь качественную дренажную систему и хорошо проветриваться. Грунт должен содержать достаточное количество кальция и фосфора, а также обладать требуемым уровнем кислотности.

Корни перед посадкой важно протравливать, а поврежденные участки устранять. Вся зараженная почва должна быть обеззаражена.

Опытные садоводы запрещают при подкормке культуры вносить свежий навоз. А также во время выращивания необходимо прореживать густые посадки, а осенью укрывать клумбу слоем мульчи. Чтобы предотвратить появление гнилостных заболеваний, следует избегать слишком обильного полива, а также вовремя устранять застой воды. В качестве действенной меры профилактики можно использовать антибиотики, но это крайняя мера, и злоупотреблять ею нельзя. Эффективно предотвращает появление болезней и насекомых обработка средствами с содержанием меди. Кроме того, при срезке пораженных частей растений важно обеззараживать места срезов, а также выполнять работу хорошо продезинфицированным инструментом.

Про болезни ирисов смотрите далее.

выбор рыбки, размер аквариума, оборудование, содержание.

Сиамский петушок, или бойцовская рыбка – широко известный представитель группы лабиринтовых. Большое разнообразие цветовых форм, неприхотливость в содержании и интересные элементы поведения делают этих рыбок идеальными аквариумными питомцами. Очень часто они становятся первой рыбкой новичков. И, безусловно, каждого аквариумиста, который заводит себе эту забавную рыбку, интересует вопрос – сколько живут рыбки петушки в аквариуме?

Продолжительность жизни петушка при оптимальном уходе составляет 2-4 года.

Для того чтобы в домашних условиях петушок прожил максимально долго, необходимо создать ему комфортную среду обитания. Но не стоит забывать, что продолжительность жизни зависит еще и от условий, в которых рыбки содержались у продавца. Поэтому к выбору своего питомца нужно подойти ответственно.

Какие условия необходимы, чтобы петушок прожил дольше?

Продолжительность жизни петушка в домашних условиях напрямую зависит от комфортных условий существования. Для этого необходимо обратить внимание на следующие пункты.

Правильно выбрать петушка при покупке

Где бы вы ни приобретали петушка – в магазине или у частного заводчика – обязательно обратите внимание на условия его содержания. Аквариум должен быть достаточно просторным, чтобы рыбка могла спокойно поплавать. Длительное содержание в маленьких банках или пластиковых контейнерах приводит рыбок в состояние стресса.

Вода в аквариумах с петушками должна быть прозрачной (допускается желтоватый оттенок). Мутная или зеленая вода, плавающие частички грязи должны вас насторожить.

При покупке петушка обратите внимание на его внешний вид и условия содержания

Рекомендуется приобретать молодых рыбок. Конечно, самцы не будут иметь таких шикарных плавников, как взрослые особи, но молодым рыбкам проще приспособится к новым условиям обитания, а вы получите возможность наблюдать, как растет и хорошеет ваш питомец.

Хороший внешний вид рыбок также указывает на их здоровье и правильные условия содержания. У петушка не должны быть оборванных или обкусанных плавников, ерошения чешуи, пелены на глазах. Бетта должна быть активна, проявлять интерес к корму.

Просторный аквариум

Чем просторнее будет аквариум, тем лучше. Ведь в емкостях большого объема будет достаточно места для плавания, удобно установить и задекорировать необходимое оборудование, проще сделать привлекательный дизайн. Для содержания самца и нескольких самок вполне хватит и 20 литров. Однако если планируется поселить петушка совместно с другими рыбками, то лучше остановиться на аквариумах от 60 литров.

Чем больше объем аквариума, тем комфортнее петушок чувствует себя

Одного петушка можно содержать в нано-аквариуме объемом не менее 6 литров, но он обязательно должен быть оснащен системой фильтрации (пример, аквариумный комплект Tetra Duo Waterfall).

В идеале аквариум должен быть оборудован крышкой, чтобы петушок случайно не выпрыгнул. Еще один важный момент: петушок – лабиринтовая рыбка, ему необходимо регулярно «делать глоток» атмосферного воздуха. Поэтому нельзя допускать, чтобы крышка аквариума была полностью герметичной, а температура окружающего воздуха отличалась от температуры воды. Заглатывание холодного воздуха чревато заболеванием рыбки.

У петушков всегда должна быть возможность сделать «глоток» воздуха

Оборудование: фильтр и терморегулятор

Создать комфортные условия для петушка, без использования специального оборудования, затруднительно. Обязательно необходим фильтр подходящей производительности и терморегулятор, ведь петушки – теплолюбивые рыбки, оптимальная температура для них составляет 24-26°С.

Петушкам необходима теплая вода (24-26°С)

Безопасные декорации

Декор в аквариуме подбирается с учетом особенностей оформления, но не должен выделять опасных соединений в воду, а также иметь острых граней, о которые петушок может повредить свой хвост. Сильные раны могут стать очагом инфекций и привести к быстрой гибели питомца.

Правильная подготовка воды

До посадки петушка надо позаботиться о том, чтобы в аквариуме установилось биологическое равновесие. Самый быстрый и надежный способ достичь этого – использование специальных препаратов-биостартеров, например, Tetra SafeStart.

Не забывайте о регулярных подменах воды, ведь накопление продуктов жизнедеятельности ухудшает здоровье рыбок. Помните, что резкие скачки параметров воды могут быть губительны для бетты.

Оптимальные параметры воды для содержания петушка: Т=24-26°С, pH=6.0-7.5, GH=2-12.

Живые растения

Положительно на жизни петушков скажется наличие в аквариуме живых растений. Они выделяют в воду необходимый кислород, а также потребляют нитраты и фосфаты – главную причину появления водорослей в аквариуме.

Петушков лучше содержать в аквариумах с живыми растениями

Совместимые соседи

Чтобы петушок прожил долгую жизнь необходимо тщательно подойти к выбору соседей.

Самцы петушков, особенно взрослые, не должны содержаться вместе, ведь это приведет к постоянным стычкам и даже может вызвать гибель одного из них.

Самцы петушков не уживаются друг с другом

Бойцовских рыбок желательно содержать небольшими «гаремами» – на одного самца должно приходиться не менее 2-3 самок. В таком случае снижается риск того, что активные самцы обидят самок, не готовых к нересту.

Не рекомендуется содержать петушков со многими цихлидами, тетраодонами, золотыми рыбками. Часто посягают ни их плавники такие виды, как барбусы, скалярии, миноры.

Сбалансированный корм

Правильное питание – залог долгой и здоровой жизни ваших петушков. Поэтому предпочтение лучше отдать качественным сухим кормам. Они безопасны, сбалансированы, содержат функциональные добавки и их удобно хранить, в отличие от живых и замороженных. Хорошим выбором станут корма для петушков Tetra Betta, TetraMin, TetraPro. Периодически угощайте своих питомцев специальными лакомствами, например, Tetra FreshDelica, чтобы разнообразить рацион своих петушков. Помните о том, что рыбок нельзя перекармливать, а несъеденные излишки корма лучше удалять из аквариума.

Кормить петушков надо небольшими порциями

Отсутствие стресса

Многие знают о такой особенности петушков: если поднести ко взрослому самцу зеркало, то он, видя свое отражение, примет его за соперника и займет боевую позу: поднимет плавники, оттопырит жабры и попробует атаковать «самозванца». Некоторые аквариумисты регулярно устраивают такой «аттракцион», чтобы полюбоваться беттой во всей красе. К сожалению, частая практика подобного приводит к снижению продолжительности жизни петушка в домашних условиях, ведь для рыбки это, прежде всего, большой стресс.

Частое вызывание агрессии с помощью приставленного зеркала приводит к стрессу рыбок

Нерест

Возможность нереститься – очень важная составляющая комфортной жизни петушка. При отсутствии нереста у самок могут образовываться кисты из-за задержки икры, а самцы становятся малоактивными, у них может тускнеть окраска.

Регулярный нерест позволяет увеличить продолжительность жизни петушков

Профилактика Заболеваний

Заболевания могут сильно сократить продолжительность жизни петушка в аквариуме. Лучшее лекарство от болезней – это профилактика. Создание благоприятной среды позволит поддерживать иммунитет рыб и снизить вероятность заболевания. Не забывайте регулярно добавлять воду витамины для рыбок, например, Tetra Vital. Если петушок все-таки заболел, то необходимо быстро начать лечение с помощью специальных препаратов для рыб в строгом соответствии с инструкцией. Чаще всего у петушков встречаются: ихтиофтириоз, плавниковая гниль, оодиноз.

описание бойцовой аквариумной рыбки, разновидности петушков, нюансы разведения рыб в аквариуме в домашних условиях, температура воды

Виды аквариумных рыбок

Рыбки петушки — одни из самых неоднозначных питомцев, которых можно приобрести для аквариума. Об их неуживчивом характере слагают легенды, а восторженные описания бойцовой аквариумной породы, оставляемые любителями, выглядят очень привлекательно. Некоторые считают, что невозможно содержание этого вида в одном аквариуме с другими особями. Что нужно знать об этом необычном питомце, чтобы не ошибиться в выборе, какими уникальными качествами обладает и чем необычна эта рыбка, расскажем далее в статье.

Описание

Разные подвиды петушков различаются в основном окрасом и длиной плавников. Свое второе название — «бойцовая рыбка» они получили благодаря участию диких особей в боях, где агрессивность представителей семейства макроподовых была очень востребована. В пылу сражения петушок распушает свои плавники и превращается в стремительное подобие шаровой молнии. Но даже в спокойном состоянии эта рыбка способна стать настоящим украшением большого или маленького аквариума.

Декоративная бойцовая рыбка Betta splendens в природной среде обитает в регионах Юго-Восточной Азии в прудах, реках со стоячей или малопроточной водой. Первые упоминания об их содержании в качестве питомцев появились в 1800 году и относились к Сиаму, где в то время пользовались популярностью специфические бои водных обитателей. Правда, узнать в них аквариумных красавцев было бы весьма сложно. Дикий вид имел довольно невзрачное тело коричневого цвета и короткие плавники.

За пределы Таиланда бойцовые рыбки попали лишь спустя столетие после начала селекционной работы. Именно благодаря переходу к международному масштабу их разведения удалось получить особей с яркой окраской. Петушки новой формации были выведены в Северной Америке в первой половине XX века, и с тех пор появилось множество аквариумных подвидов самых невероятных цветов.

Дикая форма Betta splendens обладает характерной окраской тела — светлой оливково-серой с полосами на корпусе, они могут быть продольными или поперечными. Длина тела у рыбок варьируется в диапазоне 4-5 см, мужские особи более крупные. Декоративные петушки часто вырастают до 10-15 см, имеют оригинальные по форме плавники.

Яркая окраска и обильные украшения характерны только для самцов, самки гораздо скромнее одарены этими достоинствами.

Для петушков, как и для других лабиринтовых рыб, характерно дыхание разных типов, они способны подниматься наверх и дышать воздухом. Среди других особенностей можно отметить:

  • характерные овальные очертания тела;
  • сплющенность корпуса с боков;
  • округлая форма хвостового и спинного плавников;
  • разнообразие окрасов от однотонных до многоцветных;
  • изменение яркости окраски при столкновении с противником – она становится насыщеннее;
  • гнездование и уход за икрой осуществляют самцы;
  • развитый территориальный инстинкт.

Все эти особенности стоит учесть при выборе петушков в качестве питомцев для своего домашнего аквариума.

Возраст и продолжительность жизни

Если приобретается не малек, а взрослая особь, важно определить возраст бойцовой рыбки. Существует несколько основных критериев оценки, при помощи которых можно произвести примерные вычисления.

  1. Длина тела. Стандартные размеры взрослых рыбок составляют 6-9 см, вырастает молодняк к 11 месяцам. Соответственно, определить возраст не составит труда. Для покупки лучше выбирать особей длиной 2-3 см, которые еще не достигли половой зрелости.
  2. Длина плавников. Если речь идет о самцах, то у молодняка они всегда выглядят более скромно. Свои роскошные длинные хвосты и «перья» рыбка приобретает по мере взросления. У старой особи плавники будут потрепанными, расщепленными.
  3. Яркость окраски. Если в аквариуме живет сразу несколько петушков, более молодых особей будет легко отличить по их яркой окраске. Она гораздо насыщеннее той, что имеют взрослые рыбы. Кроме того, с возрастом у питомца появится характерный горб, глаза приобретут белесый оттенок. Эти признаки стоит учесть при выборе рыбы для домашнего содержания, ведь живут петушки не более 1-2 лет.

Виды

Бойцовая тайская рыбка отличается разнообразием вариантов окраски. Благодаря работе селекционеров, невзрачная в природе, стараниями специалистов она расцвела яркими красками. Сегодня есть белые и мраморные, черные, яркие красные, синие, фиолетовые подвиды, драконовые, маскарадные и пегие, они бывают одноцветными, двухцветными, многоцветными. По своим декоративным характеристикам рыбки петушки могут быть самых разных видов.

  • Плакатными, с более короткими веерообразными плавниками, более широкими, чем у других видов.
  • Вуалехвостыми, с длинными вуалевыми украшениями на теле самца. Двойными являются и плавники, и хвост. Поэтому рыбка может именоваться двухвостой.
  • Полумесяцехвостыми или халфмунами. Для них характерен хвост полулунной формы.
  • Коронохвостыми. Рыбки украшены хвостом, разделенным на отдельные короновидные «перья». Коронохвостый тип один из самых красивых.
  • Круглохвостыми, с закругленной формой плавниковых отростков. Самые близкие по внешнему виду к природной форме и наименее декоративные.
  • Королевскими – так именуются самые крупные разновидности. Их плавники веерообразные, не очень длинные.
  • Дамбо. Петушки имеют очень длинные грудные плавники, во время движения интересно развевающиеся в воде, подобно ушам слона.
  • Флагохвостыми. У этих рыбок хвост и плавники имеют прямоугольную форму, похожую на полотнище флага.
  • Кистехвостыми или копьехвостыми, с декоративными элементами в форме кисти или наконечника копья. Боковые сегменты хвоста короче его центральной части.
  • Дельтахвостыми. С плавниками и хвостом в виде латинской буквы дельта.

Это основные декоративные разновидности. Но селекционная работа не стоит на месте, и регулярно появляются новые интересные подвиды бойцовых рыбок.

Как выбрать?

    При выборе рыбки петушка для домашнего содержания важно учитывать ряд правил.

    1. Приобретать питомца только в проверенных магазинах или у заводчиков. Чем лучше были условия содержания, тем выше вероятность, что рыбка легко адаптируется на новом месте жительства. Лучше выбирать небольшие специализированные магазины, сотрудничающие с заводчиками.
    2. Брать рыбок небольшого размера. Молодые петушки имеют длину тела 2-3 см, более крупные рыбки могут прожить на новом месте совсем недолго.
    3. Не приобретать питомца из явно грязного, мутного аквариума. Не стоит брать рыбку из перенаселенного резервуара, с явными признаками стресса.
    4. Обращать внимание на состояние здоровья. Глаза должны быть чистыми и ясными, чешуя без слизи и пятен, окрас ярким, плавники длинные, без изломов и обрывов. Здоровая рыбка активна, любопытна, при виде опасности раздувается.
    5. Сразу определить пол. Для одиночного содержания лучше брать более декоративного самца. Они ярко окрашены, имеют характерные плавники и хвостовую часть.

    Этих базовых рекомендаций будет достаточно для того, чтобы не ошибиться при покупке бойцовой рыбки для домашнего аквариума.

    Правила содержания

    Создание хороших условий содержания — основа комфорта для рыбок петушков. Этим питомцам нужны:

    • чистая прозрачная вода, менять ее придется регулярно;
    • растения, на которых будет отдыхать бойцовый таец;
    • интересное оформление дна декорациями.

    Стоит избегать погружения в аквариум острых предметов, иначе могут быть повреждены плавники. Ждать, пока отрастает хвост, в этом случае можно долго.

    Потребуется и свободное пространство — днем рыбки любят играть в воде, часто держатся поближе к поверхности. Если на ночь выключать подсветку или не использовать ее, питомец спит в зарослях зелени.

    Резервуар для содержания лучше подбирать прямоугольный — в круглом аквариуме петушки смотрятся красиво, но испытывают серьезный стресс.

    Одной особи требуется не менее 3-4 л воды, лучше, если при одиночном содержании емкость резервуара будет достигать 10-15 л.

    В просторный уже заселенный аквариум можно подсаживать разнополых петушков, или разграничивать перегородками отсеки для каждой особи при монопородном содержании. В них проделываются отверстия, обеспечивающие свободный ток воды. Возле импровизированной стенки высаживаются растения, позволяющие создать ощущение изолированного содержания для каждого самца. У любого аквариума обязательно наличие крышки рыбки прыгучи и любопытны.

    Для аквариумного содержания температура воды должна оставаться постоянной, не ниже +18… 19 градусов Цельсия.

    Бойцовые рыбки могут обходиться без дополнительных обогревателей. Но оптимальными для петушков, как и для других тропических видов, считаются показатели в +24… 28 градусов Цельсия. Другие характеристики среды: 6-7,5 pH, жесткость не выше 15 единиц. В качестве домашнего средства антибактериальной обработки в воду добавляют соль – на 3 л жидкости достаточно 0,5 ч. л.

    Подмена 1/6 части среды в аквариуме небольшого объема нужна до 10 раз в месяц, в большом – каждые 14 дней или по мере необходимости, пузыри на поверхности — будущее гнездо, удаляются с остальными загрязнениями.

    Аэрация для лабиринтовых рыб будет излишней, она нужна лишь малькам первого месяца жизни. А вот фильтром пренебрегать не нужно, но достаточно выбрать маломощную модель. Сильное течение эти рыбки плохо переносят, в природе живут в водоемах с почти стоячей водой. При выборе грунта стоит отдать предпочтение мелкому гравию, морскому или речному песку темного цвета, предварительно обработанному против бактерий и паразитов.

    Разведение

    Изучить нюансы разведения рыб в аквариуме в домашних условиях следует заранее. Петушки не живородящие, но постоянно содержать пару вместе нет смысла — питомцы будут проявлять агрессию. А вот отличить самку от самца довольно легко.

    У особи мужского пола плавники и хвост украшены длинными вуалевыми отростками, тело стройное и удлиненное. Самка меньше, компактнее, с более округлым телом. У нее укороченные хвостовые, грудные и спинные плавники, рыбки старше трех месяцев имеют характерную белую область в нижней части брюшка, перед хвостом.

    К размножению готовы особи, достигшие возраста 6 месяцев.

    Разводить рыбок рекомендуется в выделенном небольшом нерестовике объемом 4-5 л. Для его обустройства необходимо:

    • отказаться от настила грунта;
    • обеспечить приглушенную, рассеянную подсветку;
    • высадить 2-3 зеленых мелколистных растения;
    • налить воду на уровень 10-15 см от дна;
    • обеспечить насыщение среды кислородом.

    Вода в нерестовик наливается после отстаивания на протяжении 3-4 суток, подогревается до постоянной температуры +28… 30 градусов Цельсия.

    До начала периода размножения рыб содержат раздельно на протяжении 10-14 суток, обеспечивают их богатым белком обильным питанием.

    Температурные параметры среды должны превышать обычные на 2-3 градуса, подмены производятся чаще, 1-2 раза в течение 7 дней.

    Процесс размножения

    В выделенную для нереста емкость первым помещается самец. Нужно дать ему время на адаптацию и строительство гнезда. После этого можно подсаживать самку, которой петушок сможет продемонстрировать результаты своих трудов. Если им удается достичь согласия, образованная пара откладывает икру и оплодотворяет ее. В процессе производится обвивание тела женской особи плавниками самца — так он выдавливает икринки.

    По завершении нереста петушок ртом переносит опавшие на дно икринки в созданное им пенное гнездо. Отец заботится о потомстве до момента, пока не появятся мальки.

    Самку по завершении нерестового периода необходимо отсадить, чтобы она не пострадала от агрессии партнера.

    Самец будет сам удалять погибшие икринки, возвращая упавшие яйца в пределы гнезда.

    Выращивание молодняка

    Стандартное время от оплодотворения до рождения у петушков составляет от 24 до 48 часов. По истечении этого периода из икры появляются малыши. Еще 3-4 дня у них уходит на то, чтобы съесть свою желточную оболочку. Далее мальки выплывают из пределов гнезда в поисках дополнительного питания. В этот момент самца пора отсаживать, иначе он будет пытаться вернуть молодняк на место, оставляя его без корма.

    Стартовое питание для мальков петушка довольно простое. Подходит живая пыль, сушеный яичный желток, микроскопические личинки циклопа. Готовые хлопья не рекомендованы к использованию, поскольку они могут замедлить развитие рыбок.

    По достижении трех недель мальков сортируют, отделяя более крупных особей от мелких.

    Со второго месяца жизни в детском аквариуме можно отключить обязательную аэрацию, поскольку орган, необходимый для дыхания, формируется на 4-5 неделе.

    Переход на взрослый режим содержания начинается для молодняка при первом проявлении территориальных инстинктов.

    Совместимость с другими рыбами

    Успех в совместном содержании во многом зависит от количества свободной площади и агрессивности конкретной особи. Самки петушков дерутся не так часто и в целом менее агрессивны. Кроме того, даже 2 разнополые особи на одной территории обычно не живут. Максимум, что можно себе позволить — подселение самки на период нереста, когда самец построил необходимое для инкубации икры гнездо в общем резервуаре и готов к ухаживаниям.

    Дерутся представители этой породы с любыми по размеру соперниками, и связано это в первую очередь с развитыми территориальными инстинктами.

    Но обычно можно подселить красивую бойцовую рыбку в уже заселенный аквариум объемом более 100 л, получив вполне мирно сосуществующее подводное царство в миниатюре.

    Невзирая на индивидуальный темперамент конкретной рыбы, можно выделить группы пород, более или менее совместимых с довольно агрессивными соседями в аквариуме.

    1. Хорошо совместимые виды. К ним причисляются сомы коридорасы и прочие неагрессивные особи, тернеции.
    2. Условно совместимые виды. К этой группе относят кардиналов, барбусов, гуппи, неонов, лабео.
    3. Полностью несовместимые виды. Пираньи и другие хищники, маленькие рыбки до 4 см длиной, яркоокрашенные особи, к совместному содержанию не рекомендованы. Подселение к золотым рыбкам грозит петушку переохлаждением.

    Оптимальным считается одиночное содержание. Петушки нуждаются в достаточном просторе и уединении, и мало стремятся к обществу других обитателей водного мира.

    Оформление аквариума

    Обустройство удобного аквариума для бойцовой рыбки потребует правильного подбора декораций.

    Растения здесь могут быть имитацией, искусственного происхождения или натуральными. Общее требование к ним — отсутствие острых, зазубренных кромок.

    Для искусственных вариантов оптимальным выбором станет изготовление декора из натурального шелка — он безопасен для обитателей резервуара, не влияет на его среду.

    Озеленение аквариума, предназначенного для петушков, живыми растениями производится с использованием горшков и путем посадки в грунт. Объемы растений могут составлять до 1/3 части всего доступного пространства, но располагают их по стенкам, не мешая плаванию рыбы. В качестве донных декораций используются коряги, камни без заостренных кромок, прошедшие высокотемпературную обработку кипятком или прокаленные в духовке. Бойцовым рыбкам нравятся гроты, замки и другие декорации.

    Возможные проблемы

    Основные проблемы, с которыми сталкиваются владельцы рыбок петушков связаны с изменением внешности питомцев. Бывает так, что самец облез и потерял свой привлекательный внешний облик, требует восстановления самки после драки – эти и другие основные проблемы стоит рассмотреть более подробно.

    • Появились пузырьки на поверхности воды. Пена в аквариуме у петушков не является поводом для тревоги. Так самец подготавливает гнездо для последующего метания икры. Ее можно просто удалить, если проводить разведение не планируется.
    • Рыбка лежит на дне и тяжело дышит, заметно движение жабрами. Такое поведение может быть характерно для старых рыб. Но подобные же симптомы наблюдаются и у молодых петушков в период акклиматизации, а также при крайне низких температурах среды (ниже +19 градусов Цельсия). Стоит проверить параметры воды и на нитраты — есть вероятность, что рыба получила химическое отравление.
    • Появились белые пятна или налет на теле. Если он наблюдается на плавниках, это плавниковая гниль — опасное специфическое заболевание, при котором рыбка полностью теряет декоративность. На теле белые пятна образуются при ихтиофтириозе, если другие рыбы присутствуют в аквариуме, понадобится карантин, велик риск гибели. Пушистый «снежный» налет, схожий с плесенью — это сапролегниоз, питомцу нужно лечение солеными ваннами и антибиотиками, необходимо обращение к ветеринару.
    • Петушок не ест. Отсутствие аппетита у этих рыбок может быть связано с переселением на новое место или изменением рациона. Новый корм питомцы запросто могут проигнорировать, особенно если речь идет о сухих спрессованных хлопьях. В этом случае исправить ситуацию поможет замена готового рациона живым — мотылем, артемиями. А также рыба может отказываться от еды со слишком крупными фракциями.
    • Слиплись плавники или хвост. Это признаки заболевания или нарушения правил содержания рыбок. Нужно обязательно обратиться к ветеринарному врачу. Если хвост и плавники облезли, это может быть связано с драками в аквариуме или нанесением самоповреждений в стрессовой ситуации.
    • Петушок выпрыгивает из аквариума. Бойцовые рыбки отличаются физической активностью, особенно в молодом возрасте, их часто привлекает мир вокруг, который они и пытаются обозревать через прыжки. Кроме того, стремиться выскочить через край может испуганный петушок в стрессовой ситуации. Чаще всего такие попытки предпринимают рыбы, содержащиеся в круглых аквариумах.
    • Рыбка плавает боком на поверхности. Как и у других лабиринтовых рыб, это может означать проблемы с пузырем. Но бывает, что при кормлении хлопьями рыбки просто хватают лишний воздух. В этом случае помогает голодная диета на 1-2 дня.

    Этим проблемы с поведением и странностями петушков не исчерпываются, но в целом вероятность столкнуться с ними при создании хороших условий содержания крайне мала.

    Советы

    Петушки — довольно неприхотливые в содержании рыбки, способные легко прожить без еды в течение 1-2 суток. Им даже рекомендуется устраивать еженедельные разгрузочные дни, позволяющие нормализовать работу пищеварительной системы. В остальное время пищу дают однократно, желательно в одно и то же время.

    Если питомец раздувает жабры и становится похож на шар — это означает, что бойцовая рыбка готова к сражению.

    Как правило, такое поведение демонстрируется при виде потенциального соперника, оно не свидетельствует о наличии проблем со здоровьем. Некоторые самцы петушков так выказывают свое расположение самке. Убедиться в справедливости этого утверждения легко: достаточно просто поставить к стеклу аквариума зеркало, и питомец тут же займет наступательную позицию.

    Петушки охотно дают себя погладить, в целом они довольно контактные рыбки. Но злоупотреблять этим нельзя, поскольку можно повредить слизистый защитный слой на чешуе, оставив питомца уязвимым для любых инфекций.

    Петушок, лежащий на дне — довольно странное зрелище. Но при краткосрочном проявлении такого поведения беспокоиться не стоит. Так рыбки отдыхают. Если же подобные периоды становятся длительными, стоит показать петушка ветеринарному врачу.

    Обзор отзывов

    Рассматривая отзывы заводчиков о бойцовых рыбках петушках, можно отметить, что почти все из них считают своих питомцев, действительно, лучшим выбором для домашнего содержания. Абсолютно все отмечают невероятную красоту этого вида. Петушки с вуалевым хвостом выглядят очень красиво и, кроме того, не нуждаются в создании специальных условий. Они настолько неприхотливы, что способны жить в условиях комнатной температуры — воду не нужно подогревать. Кроме того, поскольку рыбка дышит воздухом, подплывая к поверхности, многие держат ее без аэраторов и других приспособлений.

    Аквариумисты отмечают, что петушки легче других пород переносят стесненные условия содержания. Фактически рыба может жить и в декоративном бокале, и в круглом небольшом аквариуме. Но снизить его агрессивность помогает только содержание в большом аквариуме. Самки — их любители именуют «курочками», обладают не менее развитой территориальностью и вполне могут сами стать агрессорами. Но если резервуар большой, часто встречаться рыбкам не приходится, и они могут вполне успешно сосуществовать.

    По отзывам заводчиков можно судить, что петушков часто выбирают в качестве первого питомца для детей. И действительно, за этой красивой рыбкой интересно наблюдать, она легко переносит детскую забывчивость при кормлении, может 1-2 дня поголодать без ущерба для здоровья. Но стоит учесть, что живут рыбки недолго, и менять питомцев придется довольно часто.

    Не обходится и без отрицательных отзывов. Петушки не слишком уживчивы, их сложно назвать душой большого коллектива. С сородичами мужского и женского пола эта рыба враждует, и более сильная особь обязательно победит, оставив слабого собрата без еды, загнав его в укрытие. Непривычные к подобным баталиям начинающие аквариумисты обычно приходят в ужас, и пытаются сдать своих питомцев обратно в магазин. По сути, нужно просто с самого начала помнить о повышенных территориальных инстинктах питомца и не экспериментировать с подселением компании в аквариум.

    О правильном уходе за петушками вы узнаете в следующем видео.

    Болезни зева у кур II: Инглювит

    Введение

    Зоб представляет собой расширенную часть пищевода, расположенную справа от трахеи у входа в грудную клетку. Стенки зоба тонкие, орган прикрепляется к коже и ключице рыхлой соединительной тканью. Есть 2 мышцы, которые поддерживают зоб и помогают в процессе опорожнения. Основная функция зоба - хранить корм, пока желудок и желудок заполнены кормом. Вскоре после того, как корм съеден, зоб может быть вздут и наполнен кормом. Это нормально.По мере того, как корм из желудка перемещается в кишечник, зоб начинает сокращаться, выбрасывая свое содержимое в пищевод и доставляя больше пищи в преджелудок и желудок.

    Закисший зоб аналогичен закупорке зоба, за исключением того, что зоб увеличивается в размерах из-за мягкого тестообразного материала и зловонной жидкости. Стенка зоба утолщается, стенки растягиваются, и зоб теряет способность возвращаться к своим первоначальным размерам в пустом состоянии (рис. 1 и 2). В результате зоб нормально не опорожняется, а содержимое обрастает вредоносными бактериями и дрожжами.Candida albicans — это дрожжевые грибки, которые обычно разрастаются. Эти дрожжи часто проникают в стенку зоба и вызывают воспаление и белые сыроподобные пятна на внутренней оболочке. Это состояние называется «микоз урожая».

    Фото 1. Боковая проекция цыпленка-бройлера с свисающим зобом. кредит изображения. Доктор И. Рохас.

    Фото 2. Вид снизу цыпленка-бройлера с висячим зобом. кредит изображения. Доктор И. Рохас.

    Возникновение

    Микоз зобов может возникнуть, когда птицы едят испорченный корм или пьют слизистую, грязную воду.Это также наблюдается у молодых птиц, которые насиживают в очень жарких условиях и пьют чрезмерное количество воды. Наконец, микоз зобов может возникнуть, если птицу в течение длительного времени лечат антибиотиками и/или имеют другие сопутствующие заболевания.

    Лечение

    Инфекцию (микоз сельскохозяйственных культур) можно лечить, добавляя йод или подкисленный сульфат меди в питьевую воду в соответствии с указаниями на этикетке в течение 3–5 дней. Обязательно держите поилки чистыми и свободными от слизи. Если зоб очень большой или расширенный, чтобы помочь нормальному прохождению пищи и воды, некоторые люди прибегают к использованию «бюстгальтера» зева. Простой укороченный бюстгальтер можно сделать из носка-трубы с открытыми обоими концами и отверстиями для крылышек. В продаже также есть «бюстгалтеры для птиц» для домашних птиц, страдающих этим заболеванием.

    Дифференциальный диагноз

    Плохое опорожнение зоба может иметь другие причины, помимо закупорки или первичного бактериального или грибкового заболевания. Болезнь Марека часто вызывает полиневрит, который может повредить иннервацию блуждающего нерва зоба. Обычно у пораженных животных будут дополнительные неврологические признаки, которые помогут дифференцировать первичный застой зоба.Непроходимость/защемление нижних отделов желудочно-кишечного тракта из-за грубого корма, инородных тел или даже опухолей также может привести к плохому опорожнению зоба. Паразитарные инглювиты, вызванные инфекциями нематодами рода Capillaria, также могут возникать протозойные инфекции, такие как трихомониаз. Получение аспирата посевной жидкости и микроскопическое исследование жидкости часто помогает дифференцировать паразитарные и грибковые инфекции посевов. Также рекомендуется провести исследование кала на наличие яйцеклеток капилляров. Лечение кислого урожая зависит от причины.

    Ссылки

    • Руководство по болезням птиц. 7 изд. Американская ассоциация птичьих патологоанатомов.
    • Керончик Б., М. Равски, Ю. Длогош, С. Святкевич, Д. Юзефяк. 2016. Функция птичьего урожая - обзор. Анна. Аним. науч. 16(3):1-26.
    • Болезни птицы, 13-е изд. АААП. Уайли-Блэквелл.

    Вирус птичьего гриппа в центре внимания

    Резюме

    Будущий спрос на продовольствие заставит сельскохозяйственные системы увеличить производство.Птица признана хорошим источником белка, и птицеводческая промышленность будет вынуждена интенсифицировать производство во многих странах, что приведет к увеличению числа ферм, на которых размещается птица с повышенной плотностью. Увеличение количества птиц на фермах может способствовать усилению передачи инфекционных патогенов среди птиц, таких как вирус птичьего гриппа, которые могут вызвать массовую смертность домашней птицы и причинить значительный экономический ущерб. Кроме того, способность некоторых появляющихся патогенов домашней птицы вызывать зоонозную инфекцию человека будет возрастать, так как увеличение числа операций с птицей может привести к увеличению контактов человека с патогенами домашней птицы.Для борьбы с повышенным риском распространения инфекционных заболеваний среди домашней птицы из-за интенсивных систем производства первостепенное значение имеет быстрое обнаружение и диагностика. В этом обзоре из литературы выделяются многочисленные технологии, которые могут способствовать точному и быстрому обнаружению и диагностике болезней домашней птицы, с акцентом на технологии, разработанные специально для диагностики вируса птичьего гриппа. Технологии быстрого обнаружения и диагностики позволяют быстрее принимать ответные меры при обнаружении болезни, уменьшая дальнейшую передачу птиц и связанные с этим расходы.Кроме того, системы быстрого обнаружения болезней предоставляют данные, которые можно использовать в системах поддержки принятия решений, которые могут предсказать, когда и где может возникнуть болезнь у домашней птицы. Другие источники данных могут быть включены в прогностические модели, и в этом обзоре обсуждаются два очень важных источника, данные из Интернета и данные об окружающей среде. Кроме того, также выделяются большие данные и аналитика больших данных, которые потребуются для интеграции объемных и переменных данных в прогностические модели, работающие практически в режиме реального времени.Внедрение новых технологий в коммерческих условиях столкнется с множеством проблем, равно как и разработка и эксплуатация моделей прогнозирования возникновения болезней домашней птицы. Связанные с этим проблемы обобщены в этом обзоре. Интенсивные системы птицеводства потребуют новых технологий обнаружения и диагностики инфекционных заболеваний. Этот обзор призван обобщить их, а также указать преимущества и ограничения различных типов исследуемых технологий.

    Ключевые слова: вирус гриппа, домашняя птица, экспресс-диагностика, большие данные, биосенсор, инфекционное заболевание количество белка, необходимое для питания всего человечества (1, 2). В частности, ожидается, что к 2050 году население мира вырастет до более чем 9 миллиардов человек, а спрос на птицу, которая представляет собой относительно полезный и эффективный источник белка, вероятно, удвоится по сравнению с 2005 годом. , ожидается, что мир будет потреблять на 40% больше куриных яиц (3). Достижение такого уровня производства требует интенсификации птицеводческих операций, что приведет к созданию более крупных ферм с большим количеством птичников и птиц. В литературе высказывается опасение, что интенсивные системы животноводства могут быть более уязвимыми к вспышкам заболеваний как среди сельскохозяйственных животных, так и среди населения (4, 5).Несмотря на такие опасения, технологические достижения, которые позволяют фермерам управлять состоянием здоровья большего количества птиц с меньшими ресурсами, являются текущим источником исследований и разработок. К таким технологиям относятся биосенсоры, носимые устройства и неинвазивные подходы к наблюдению за болезнями домашней птицы. Кроме того, эти интенсивные системы смогут использовать данные, полученные с различных датчиков и устройств, что позволит фермерам лучше отслеживать и контролировать как птиц, так и окружающую их среду в результате принятия более эффективных решений в отношении управления.Возможность анализа данных в режиме реального времени может снизить угрозу появления новых инфекционных заболеваний, поскольку эти инструменты могут позволить фермерам быть в курсе состояния здоровья и благополучия большого количества домашней птицы. В свете растущей угрозы инфекционных заболеваний от крупных птицеводческих хозяйств и потенциала технологий для улучшения диагностики, эпиднадзора и раннего выявления цель данного обзора состоит в том, чтобы изучить современное научное понимание того, как можно использовать технологии для снизить угрозу инфекционных заболеваний в птицеводстве.

    При рассмотрении инфекционного заболевания важно точно определить, когда и где происходит заражение на птицефабриках, чтобы можно было принять меры для предотвращения дополнительного заражения и потерь. Это не только поможет повысить производительность, но также важно с точки зрения безопасности человека, поскольку некоторые патогены домашней птицы, такие как вирус птичьего гриппа (ВГП), представляют значительный риск заражения человека и возможных пандемий среди населения (6). Кроме того, другие патогены домашней птицы, такие как Escherichia coli, Salmonella и Campylobacter jejuni , способны вызывать заболевания у человека (7–9).Заболеваемость появляющимися болезнями среди сельскохозяйственных животных и людей увеличивается, и основной причиной этого является увеличение контактов между дикими видами животных, домашним скотом и людьми (10). Кроме того, производство мяса птицы будет вынуждено увеличиваться в то время, когда происходят глобальные экологические изменения, а люди продолжают расширять границы городов, жилых районов и сельскохозяйственных угодий. Все эти факторы повышают риск появления новых инфекционных заболеваний среди населения.Появление высокопатогенного ВГП H7N9 в Китае является примером проблем, связанных с интенсификацией птицеводства, что увеличивает плотность поголовья домашней птицы, что ведет к увеличению возможностей передачи инфекции от птиц к человеку (11). Оптимальные стратегии, которые помогут снизить угрозу появления новых болезней у домашней птицы, включают в себя способность быстро выявлять и диагностировать болезни птиц как можно быстрее, а также способность прогнозировать вспышки. Прогнозирование инфекционных заболеваний и инициирование быстрого реагирования имеет большое значение как для безопасности населения, так и для птицеводческой отрасли.Например, в 2014 г. официальное обнаружение высокопатогенного вируса гриппа (HPAIV) H5N2 на фермах по разведению индеек и птиц в Британской Колумбии привело к их карантину 2 декабря Канадским агентством по надзору за продуктами питания (12). Однако первые признаки инфекции были отмечены на этих фермах 26 и 28 ноября, то есть между началом заболевания и принятием мер по ограничению распространения прошло до 5 дней. В конечном итоге инфекция HPAIV распространилась на несколько других ферм в Канаде и США в течение следующих недель и месяцев, что привело к выбраковке более 48 миллионов птиц (13). С ситуациями в будущем можно справиться лучше, сократив время, проходящее между первоначальным заражением птицы и окончательным диагнозом. Технологии датчиков и наблюдения могут обеспечить гораздо более быстрое обнаружение болезней птиц в дополнение к быстрой диагностике на месте. Это позволит быстрее принять меры противодействия, например, путем помещения птичников или ферм на карантин, тем самым снизив вероятность распространения инфекции на другие группы домашней птицы.

    Способность сдерживать инфекционные заболевания на птицефабриках может значительно выиграть от систем, которые, во-первых, могут быстро выявлять нездоровых или больных птиц, а во-вторых, устройства, которые могут точно и быстро определять возбудителя, вызвавшего заболевание.Устройства, которые делают это реальностью, являются текущим источником исследований и включают в себя множество различных технологий, включая несколько типов биосенсоров и экспресс-анализов, инструменты анализа птицы в режиме реального времени, которые используют аудио или визуальные компоненты для оценки здоровья птицы, а также носимые устройства. датчики, которые дополнительно могут передавать и анализировать данные о здоровье птицы. Многие устройства или системы, которые можно использовать для быстрого выявления инфекций и болезней домашней птицы, различаются по стратегии, каждая из которых имеет свои преимущества и недостатки.В этом обзоре описаны некоторые из этих технологий, которые сгруппированы в три категории: биосенсоры, носимые датчики для домашней птицы и механизмы неинвазивного бесконтактного анализа. Кроме того, будут обсуждаться преимущества и недостатки каждой категории устройств в отношении их роли в обнаружении и прогнозировании возникающих заболеваний у домашней птицы.

    Прогнозирование инфекционных заболеваний домашней птицы становится возможным, поскольку новые технологии увеличивают доступность данных, которые можно использовать в прогностических моделях.Данные, полученные с помощью технологий быстрого обнаружения и диагностики, будут очень важным источником, однако другие источники данных также могут использоваться для прогнозирования вероятности возникновения болезни у домашней птицы. При создании прогностических моделей необходимо учитывать факторы, вызывающие болезни домашней птицы, в том числе широкий спектр экологических и географических факторов, таких как климат, погода, распределение видов-хозяев-резервуаров и плотность поголовья скота. Кроме того, поисковые запросы в Интернете и данные из социальных сетей, которые считаются эффективными источниками данных для прогнозирования заболеваемости вирусом гриппа человека (14), также можно использовать для прогнозирования и отслеживания вспышек и новых заболеваний среди домашней птицы.Данные, собранные с помощью технологий быстрого обнаружения, в дополнение к вышеупомянутым источникам данных, также могут быть учтены в системах поддержки принятия решений, которые могут помочь определить риск во время вспышек, побуждая производителей принимать более эффективные решения, касающиеся управления. В этом обзоре также будут выделены и обсуждены отдельные источники данных, которые имеют отношение к эмерджентным заболеваниям домашней птицы. Кроме того, большие данные и аналитика больших данных будут подчеркнуты в контексте разработки прогностических моделей возникновения болезней у домашней птицы, в дополнение к системам поддержки принятия решений на основе данных, которые улучшают процесс принятия решений, касающихся методов управления, когда сталкиваются с угрозой возникновения болезни.

    Выводы

    По мере роста производства птицы птицефермы будут вынуждены увеличиваться в размерах и увеличивать поголовье птицы. Спрос на увеличение производства заставит производителей быть эффективными, и сокращение потерь будет иметь решающее значение, однако густонаселенные птицефабрики, скорее всего, только увеличат вероятность потерь из-за инфекционных заболеваний. Проще говоря, традиционных систем мониторинга заболеваний и инфекций будет недостаточно для достижения будущих производственных целей.Вместо этого системы быстрого обнаружения, которые постоянно контролируют домашнюю птицу на наличие болезней, могут дополнить уже существующие системы обнаружения и диагностики инфекционных заболеваний. Быстрое обнаружение в режиме реального времени может немедленно предупредить производителей и определить местонахождение проблем. Кроме того, биосенсоры предоставят производителям конкретную диагностику, которая проводится на месте. Сочетание раннего обнаружения и быстрой диагностики имеет большое значение для производителей, поскольку позволяет принять незамедлительные меры для предотвращения любого последующего распространения инфекции среди других птиц, тем самым предотвращая потенциальные потери, которые, вероятно, произошли бы, если бы использовались традиционные методы.По мере того, как эти устройства станут обычным явлением на фермах, они также будут предоставлять данные, которые помогут прогнозировать появление новых заболеваний у домашней птицы. В дополнение к данным, созданным на фермах, важными для сбора и включения в прогностические модели станут сетевые, экологические и географические данные. Динамические данные, которые будут включены в эти модели, потребуют систем аналитики больших данных для учета объема и разнообразия данных в дополнение к необходимости анализа в реальном времени. Внедрение технологий в птицеводстве, улучшающих выявление, диагностику и прогнозирование инфекционных заболеваний, в настоящее время сталкивается с множеством проблем, однако они будут необходимы для достижения требуемых объемов производства в будущем.

    Обзор болезни и новые возможности диагностики

    Clin Microbiol Rev. 1999 Oct; 12(4): 627–632.

    Научно-исследовательский институт животных, Moorooka 4105, Австралия

    * Почтовый адрес: Научно-исследовательский институт животных, Locked Mail Bag no. 4, Мурука 4105, Австралия. Телефон: 61 7 3362 9498. Факс: 61 7 3362 9429. Электронная почта [email protected] Copyright © 1999, Американское общество микробиологии Эта статья цитировалась в других статьях PMC.

    Abstract

    Инфекционный ринит — хорошо известное и часто встречающееся заболевание верхних дыхательных путей кур, вызываемое бактерией Haemophilus paragallinarum .Возникновение недавних вспышек в Северной Америке показало, что заболевание может быть значительным как у мясных цыплят, так и у кур-несушек. В развивающихся странах ринит обычно осложняется наличием ряда других инфекций, что приводит к тяжелому заболеванию и значительным экономическим потерям. В Южной Америке были обнаружены необычные формы заболевания, включающие артрит и септицемию, опять же связанные с присутствием других возбудителей. Недавно обнаруженные бактерии, такие как Ornithobacterium rhinotracheale и фенотипические вариантные формы H.paragallinarum и близкие родственники (вариант в том, что им больше не требуется V-фактор для роста in vitro) увеличили трудности, связанные с диагностикой заболевания. Как в Южной Америке, так и в Южной Африке высказывались предположения о появлении новых сероваров или вариантов сероваров, связанных с необычными клиническими проявлениями и вызывающих неудачи вакцин. Окончательных доказательств, подтверждающих или опровергающих роль этих «вариантов» в неудачах вакцин, в настоящее время нет. Недавно была описана новая диагностическая методика на основе ДНК, включающая ПЦР, которая значительно поможет в диагностике инфекционного насморка.

    Инфекционный ринит — острое респираторное заболевание кур. Клинический синдром известен с 1930-х годов (5). Болезнь встречается во всем мире и вызывает экономические потери из-за увеличения количества выбраковки и заметного (от 10% до более 40%) снижения производства яиц, особенно на разновозрастных фермах. Ранние исследователи идентифицировали возбудитель как « Haemophilus gallinarum », организм, которому для роста in vitro необходимы факторы X (гемин) и V (НАД).Однако с 1960-х по 1980-е годы было показано, что всем изолятам возбудителя болезни требуется только фактор V, и они были названы Haemophilus paragallinarum (5). Как более подробно обсуждается ниже, независимые от V-фактора изоляты H. paragallinarum встречались в Южно-Африканской Республике с 1989 г. (26). Таким образом, возбудитель инфекционного насморка рассматривается как Haemophilus paragallinarum , микроорганизм, который может быть либо зависимым от V-фактора, либо независимым.

    В этом обзоре представлена ​​информация, появившаяся в последние годы и подчеркивающая сложный характер вспышек инфекционного насморка в развивающихся странах, где важными осложняющими факторами являются другие возбудители болезни и/или стрессовые факторы. Кроме того, охвачена литература, указывающая на то, что фенотипическая и серологическая природа H. paragallinarum в некоторой степени изменилась в некоторых географических регионах. Влияние этих изменений на меры контроля и профилактики подвергается критическому анализу.Кроме того, рассматривается влияние на некоторые из этих возникающих проблем диагностического теста нового поколения, основанного на методе ПЦР. Поскольку существует несколько текстов о болезни, возбудителе и вакцинах (2, 5, 8), в этом обзоре подробно рассматриваются только последние события.

    КЛИНИЧЕСКОЕ ЗАБОЛЕВАНИЕ

    Инфекционный ринит может возникать у растущих цыплят и несушек. Наиболее распространенными клиническими признаками являются выделения из носа, отек лица, слезотечение, анорексия и диарея. Снижение потребления корма и воды замедляет рост молодняка и снижает яйценоскость в стадах-несушках (5).Потенциальное воздействие насморка на мясных цыплят было подчеркнуто сообщениями об экономически важных вспышках в двух штатах США (17, 19).

    В Северной и Южной Америке были зарегистрированы необычные клинические признаки. Как в Северной, так и в Южной Америке были зарегистрированы вспышки насморка, при которых у цыплят проявлялись клинические признаки, более типичные для синдрома опухшей головы (17, 30).

    Совершенно иная природа инфекционного ринита, осложненного другими возбудителями и стрессовыми факторами, была продемонстрирована отчетами из таких стран, как Аргентина, Индия, Марокко и Таиланд.Уникальные клинические проявления, такие как артрит и септицемия, предположительно осложненные присутствием других обнаруженных патогенов, таких как Mycoplasma gallisepticum , M. synoviae , Pasteurella spp., Salmonella spp., и вирус инфекционного бронхита, были обнаружены в стадах бройлеров и кур-несушек в Аргентине (30). Во время этих вспышек впервые сообщалось об выделении H. paragallinarum из нереспираторных органов, таких как печень, почки и предплюсна (30).В округе Курнул в Индии инфекционный ринит считается вторым по важности бактериальным заболеванием, связанным с летальным исходом, после сальмонеллеза (32). В исследовании, проведенном в Марокко, сообщалось о 10 вспышках острого ринита, которые были связаны со снижением яйценоскости от 14 до 41% и смертностью от 0,7 до 10% (36). Исследование деревенских цыплят в Таиланде показало, что инфекционный ринит был наиболее частой причиной смерти цыплят в возрасте до 2 месяцев и старше 6 месяцев (36). Только у деревенских цыплят в возрасте от 2 до 6 месяцев другие болезни, особенно болезнь Ньюкасла и пастереллез, вызывали больше смертей, чем ринит (36).В целом в этих отчетах подчеркивается, что клинические признаки и экономические последствия осложненных инфекций ринита, наблюдаемых в развивающихся странах, могут заметно отличаться от таковых при неосложненных инфекциях, обычно наблюдаемых в развитых странах.

    «ПОЯВЛЯЮЩИЕСЯ» ИЛИ ВАРИАНТЫ СЕРОВАРОВ

    В качестве краткой предыстории вопроса о «появляющихся» или вариантах сероваров важно понимать, что в основном использовались две разные, но родственные схемы серотипирования для H. paragallinarum — Страница (29) и схемы Куме (23).

    Схема Пейджа первоначально была разработана с использованием теста агглютинации на чашках или предметных стеклах для распознавания трех сероваров, А, В и С (29). Однако было показано, что использование технологии ингибирования гемагглютинации (HI) является гораздо лучшим методом для идентификации серовара Page полевых изолятов H. paragallinarum (3). Широко признано, что три серовара Пейджа представляют собой отдельные «иммуновары», поскольку инактивированные вакцины, основанные на каком-либо одном сероваре Пейджа, не обеспечивают защиты от двух других сероваров Пейджа (5).Общепризнанно, что перекрестная защита происходит внутри серовара Page (5).

    Схема серотипирования Kume изначально была основана на тестах ингибирования гемагглютинации, которые распознавали семь сероваров, организованных в три серогруппы, обозначенные как I, II и III (23). В последующих публикациях сообщалось о существовании еще двух сероваров и о признании того, что три серогруппы Kume соответствуют трем сероварам Page (4). Следовательно, реорганизованная схема Kume теперь распознает три серогруппы (обозначенные как A, B и C), которые соответствуют сероварам Page, при этом четыре сероваров распознаются в обеих серогруппах Kume A и C (4).Важно понимать, что схема серотипирования Kume является сложной и технически сложной системой (5) и что в настоящее время ни одна лаборатория в мире не выполняет полное серотипирование Kume. Хотя окончательные эксперименты по перекрестной защите для всех четырех сероваров в обеих серогруппах Kume A и C еще не проводились, общепринятой догмой является то, что серовары внутри серогруппы Kume обладают перекрестной защитой (5).

    Эти принятые догмы о перекрестной защите внутри сероваров Page и серогрупп Kume недавно были поставлены под сомнение появлением «вариантных» или необычных сероваров.Как в Аргентине, так и в Бразилии около 40% исследованных к настоящему времени изолятов серовара А не распознаются моноклональными антителами, специфичными для этого серовара (6, 34). Эти моноклональные антитела-отрицательные изоляты, которые не были зарегистрированы больше нигде в мире, не исследовались по схеме Куме. Было высказано предположение, что эти «вариантные» изоляты серовара А страницы могут достаточно отличаться от типичных вакцинных штаммов серовара А, что может привести к неэффективности вакцины (34).

    Имеются данные о том, что изоляты аргентинского серовара B весьма генетически отличаются от всех других изолятов H.paragallinarum независимо от серовара (10). Это привело к предположению, что уникальная природа этих аргентинских изолятов серовара B может означать, что коммерческие вакцины, основанные на «типичных» изолятах серовара B из Северной Америки или Европы, не могут обеспечить защиту (35).

    Имеются некоторые данные, подтверждающие это предположение об антигенном разнообразии серовара пажа B. Бивалентные вакцины на основе сероваров пажа A и C обеспечивают защиту от штамма Spross серовара пажа B, но не против двух южноафриканских изолятов серовара пажа B (39). Кроме того, существует только частичная перекрестная защита в пределах различных штаммов серовара Page 3 B (39). Хотя схема серотипирования Kume распознает только один сероварн, B-1 (4), это не следует рассматривать как свидетельство антигенной гомогенности. Скорее, это отражение того, что только небольшое количество изолятов серовара B было исследовано по схеме серотипирования Kume. Весьма вероятно, что другие серовары будут распознаны в пределах серогруппы B Kume, если будет изучена коллекция таких изолятов.

    Имеются данные о резком изменении заболеваемости сероваров H.paragallinarum в Южной Африке в последние годы. Брэгг и др. (11) сообщили о серовариантах H. paragallinarum в 1970-х, 1980-х и 1990-х годах. Используя схему частичного серотипирования куме, они сообщили, что в последнее время серовар куме C-3 стал доминирующим сероваром. Заболеваемость сероваром C-3 куме увеличилась с 30% в 1970-х до более чем 70% в начале 1990-х (11). Это появление серовара Куме С-3 произошло в то время, когда инфекционный ринит оставался важным и широко распространенным заболеванием, несмотря на широкое использование коммерческих вакцин (11). Брэгг и др. (11) предположили, что явный провал коммерческих вакцин в Южной Африке (ни одна из которых не содержит серовара Куме С-3) произошел из-за того, что доминирующим сероваром в полевых условиях является серовар Куме С-3. Они предположили, что изоляты серовара C-3 куме настолько антигенно отличаются от других сероваров куме C (C-1 и C-2), включенных в коммерческие вакцины, что перекрестная защита ограничена (11).

    В целом, имеется ряд сообщений, предполагающих, что серологически «вариант» H.paragallinarum может быть причиной неэффективности вакцин. Тем не менее, не было никаких отчетов, основанных на окончательных доказательствах испытаний вакцинации, подтверждающих эти предположения. Необходима такая работа, в том числе работа по изучению уровня перекрестной защиты внутри серогрупп А и С куме. идентичны инфекционному насморку) были получены от южноафриканских кур (20).Хотя эти изоляты не нуждались в V-факторе, методы ДНК показали, что они являются типичными H. paragallinarum (26). Подавляющее большинство NAD-независимых изолятов относятся к серовару Page A (12, 25), хотя недавний отчет показал, что некоторые изоляты относятся к серовару Page C (12). Было показано, что репрезентативная коллекция изолятов H. paragallinarum серовара A, зависимых от NAD, имеет общий уникальный ДНК-отпечаток, что позволяет предположить, что они являются клональными по своей природе и, возможно, произошли из точечного источника (25).

    Появление NAD-независимой H. paragallinarum оказало значительное влияние на Южную Африку. В регионе Квазулу-Натал в Южной Африке NAD-независимые изоляты H. paragallinarum теперь более распространены, чем классические H. paragallinarum . Например, отношение классических изолятов H. paragallinarum к NAD-независимым изолятам H. paragallinarum увеличилось с 1:1,4 в 1989 г. до 1:9,8 в 1993 г. (20).

    Хорнер и др. (20) также предположили, что NAD-независимые изоляты могут вызывать воздушный саккулит чаще, чем классический H. paragallinarum изолятов. Кроме того, было предположение, что NAD-независимые изоляты могут быть достаточно разными, чтобы вызывать неудачи с вакцинами, основанными на традиционном NAD-зависимом H. paragallinarum (12, 20). Чтобы определить, так ли это, необходимы окончательные испытания перекрестной защиты.

    ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА: РОЛЬ ВАРИАНТНЫХ БАКТЕРИЙ

    В последние годы у домашней птицы был обнаружен ряд новых или «вариантных» бактерий, что затруднило надежную диагностику инфекционного насморка.

    В начале 1990-х годов новая бактерия была выделена из южноафриканских бройлеров, у которых были легкие проблемы с дыханием и плохой рост. Только в 1994 году микроорганизм был классифицирован как Ornithobacterium rhinotracheale (37). Организм присутствует в Европе (1) и США (16, 28). Хотя до сих пор ведутся споры, имеются доказательства того, что O. rhinotracheale может вызывать задержку роста после введения в воздушный мешок и задержку роста, воздушный саккулит и пневмонию после введения аэрозоля как у кур, так и у индеек (38). Для целей данного обзора заболевание, связанное с O. rhinotracheale , будет называться орнитобактериозом. Недавнее молекулярное исследование показало, что изоляты O. rhinotracheale от коммерческой птицы представляют собой небольшую группу близкородственных клонов, что указывает на то, что, возможно, этот микроорганизм был лишь недавно интродуцирован из популяций диких птиц (1).

    Общепринятая клиническая картина, связанная как с инфекционным ринитом, так и с орнитобактериозом, указывает на то, что большинство специалистов считают, что два заболевания не должны иметь сходных клинических признаков.Однако недавнее исследование в Южной Африке (12) показало, что в общей сложности 40 изолятов O. rhinotracheale были получены из носовых пазух цыплят с клиническими признаками, сходными с симптомами, связанными с инфекционным ринитом. Следовательно, лаборатории должны быть готовы учитывать инфекционный ринит и орнитобактериоз при дифференциальной диагностике цыплят с легкой формой заболевания верхних дыхательных путей.

    В большинстве стран дифференциация между H. paragallinarum и O.rhinotracheale несложно, потому что классический H. paragallinarum демонстрирует зависимость от NAD, в то время как O. rhinotracheale не требует наличия NAD. Однако в районах, где, как известно, существует NAD-независимый H. paragallinarum (и в настоящее время это ограничено Южной Африкой), дифференциация O. rhinotracheale и NAD-независимого H. paragallinarum требует ферментации углеводов. закономерности определить. Микробиологи-диагносты должны знать о биохимических свойствах H.paragallinarum и быть готовым распознать H. paragallinarum на основе биохимических свойств, даже если изолят может быть независимым от НАД.

    Еще одна группа «вариантных» организмов, которые могут вызывать трудности в правильной диагностике инфекционного насморка, — это организмы, когда-то известные как « Haemophilus avium », непатогенные птичьи штаммы Haemophilus , которые были официально признаны в 1970-х годах (18). Исследования гибридизации ДНК показали, что « H.avium » состоит из трех гомологических групп ДНК, и эти три новых вида помещаются в род Pasteurella как P. volantium , P. avium и Pasteurella sp. таксон А (27). До недавнего времени все изоляты этих трех таксонов, полученные от кур, были NAD-зависимыми. Однако Брэгг и соавт. в Южной Африке описали NAD-независимые изоляты всех трех таксонов (12). Еще одна сложность заключается в том, что эти аберрантные или «вариантные» микроорганизмы были получены от цыплят с клиническими признаками, сходными с симптомами инфекционного насморка (12).Однако обычно считается, что эти микроорганизмы не вызывают никаких заболеваний, что свидетельствует о важности обеспечения того, чтобы принятые патогены, такие как H. paragallinarum и O. rhinotracheale , не были пропущены, в то время как непатогенные микроорганизмы выделяются и идентифицируются.

    Следовательно, цыплята с клиническими признаками, указывающими на инфекционный ринит, могут давать следующие микроорганизмы: H. paragallinarum , как NAD-зависимые, так и NAD-независимые; O. rhinotracheale , независимый от НАД; стр.volantium , как NAD-зависимый, так и NAD-независимый; P. avium , как NAD-зависимый, так и NAD-независимый; и Pasteurella sp. таксон А, как зависимый от НАД, так и независимый от НАД.

    Из этих пяти бактерий только H. paragallinarum повсеместно признаны патогенными. Из остальных четырех три ( видов Pasteurella ) обычно считаются комменсальными организмами, не вызывающими заболеваний у цыплят; нет единого мнения о патогенном потенциале О.ринотрахеальная .

    Правильная и надежная идентификация бактерий, выделенных от цыплят с легкими клиническими признаками заболевания верхних дыхательных путей, является абсолютным требованием для разработки, применения и мониторинга устойчивых программ профилактики и контроля. Неправильный диагноз может привести к неправильному или даже неправильному использованию антибиотиков или неправильному принятию программы вакцинации, направленной против болезни, которая не связана с болезнью. Очевидно, что перед диагностическими лабораториями, занимающимися респираторными заболеваниями кур, в настоящее время стоит сложная задача по выделению и правильной идентификации бактерий, связанных с этими заболеваниями.

    ВАРИАНТЫ ДИАГНОСТИКИ

    Традиционная фенотипическая идентификация

    Традиционный окончательный метод диагностики инфекционного насморка требует выделения подозрительной бактерии, а затем обширной биохимической характеристики для подтверждения идентичности изолята (5). Это сложный набор требований. H. paragallinarum — прихотливый, медленнорастущий организм. Следовательно, он часто зарастает другими, более быстрорастущими комменсалами. Биохимическая характеристика требует наличия специализированных, дорогих сред, которые могут поддерживать рост НАД-зависимых бактерий; такие среды часто выходят за рамки ресурсов диагностических лабораторий, особенно в развивающихся странах, где насморк остается актуальной проблемой.Появление NAD-независимых H. paragallinarum , а также O. rhinotracheale и NAD-независимых изолятов P. avium , P. volantium и Pasteurella sp. таксон А значительно усложнил ситуацию.

    В таблице перечислены фенотипические тесты, которые можно проводить для дифференциации H. paragallinarum от микроорганизмов Pasteurella , которые можно обнаружить у кур, а также O.ринотрахеальная . Подробная информация о методах выполнения этих тестов была недавно опубликована (8).

    Таблица 1

    Отличительные свойства птичьего haemophili и О. rhinotracheale

  1. 5 - -
  2. Недвижимость О. rhinotracheale H. paragallinarum П. Авиум P. volantium Pasteurella sp. Taxon A
    каталаза - - - + + + ODC B - V -
    β-Galactosidase + + - - +
    Arabinose - - - - +
    Galactose + - + + +
    + - + 9
    Mannitol - + - +
    Sucrose - V + + +
    TrehaLose - - + + +

    Молекулярная идентификация

    Был недавнее значительное усовершенствование инструментов, доступных для помощи в диагностике инфекционного ринита. Был разработан тест ПЦР, специфичный для H. paragallinarum (14). Этот тест является быстрым (результаты доступны в течение 6 часов по сравнению с днями для обычных методов) и распознает все протестированные изоляты H. paragallinarum (14). Более 40 изолятов H. paragallinarum дали положительный результат в тесте, включая NAD-независимый H. paragallinarum из Южной Африки, вариантные изоляты серовара A Page и необычные изоляты серовара B из Аргентины (14).Кроме того, эта ПЦР, называемая ПЦР HP-2, дала отрицательные реакции со многими близкородственными бактериями. В частности, НАД-зависимые формы P. volantium , P. avium и Pasteurella spp. а также O. rhinotracheale дают отрицательную реакцию в этой ПЦР (24). Эта ПЦР была разработана методом случайного клонирования, и нет информации о роли мишени, размер которой составляет 0,5 т.п.н. (14).

    При использовании непосредственно на мазках из носовых пазух, полученных от искусственно инфицированных цыплят в ходе исследований, проведенных в Австралии, ПЦР HP-2 была эквивалентна по точности культуре, но была намного быстрее (14).

    В то время как HP-2 PCR был первоначально разработан в Австралии, теперь он был успешно передан в Китай. При сравнении традиционной культуры и ПЦР HP-2 в Китае было показано, что ПЦР превосходит традиционную культуру при использовании для рутинных диагностических представлений (13). Тест ПЦР и традиционная культура использовались параллельно для расследования предполагаемых вспышек инфекционного насморка на восьми коммерческих фермах в Китае. Предварительный диагноз инфекционного ринита был основан на полевой диагностике.Затем живых цыплят или куриные головы доставляли с поля в пекинскую лабораторию. Собирали мазки из носовых пазух и исследовали непосредственно с помощью ПЦР, а также культивировали на H. paragallinarum . ПЦР HP-2 выявил 15 из 39 цыплят как положительные, причем эти 15 птиц были получены с шести из восьми ферм, в то время как культуральное исследование выявило только 8 из 39 цыплят как положительные, причем эти птицы были получены только с четырех из восьми ферм (13). . На двух фермах, где были цыплята с положительным результатом ПЦР, но отрицательным результатом посева, у цыплят наблюдались типичные клинические признаки, что является дополнительным доказательством того, что результаты посева были ложноотрицательными.Представленные цыплята с двух ферм, которые были отрицательными как по культуре, так и по ПЦР, не проявляли типичных клинических признаков инфекционного насморка при поступлении в центральную лабораторию (13). Проблемы плохих образцов, задержек в транспортировке и некачественных (но дорогих) сред означают, что в развивающихся странах культура будет иметь более высокий уровень неудач, чем в развитых странах.

    Недавняя работа показала надежность HP-2 PCR. В дальнейшей работе, проведенной в Китае, было показано, что образцы можно хранить до 180 дней при температуре 4 или -20°C, и большинство известных положительных образцов останутся положительными в ПЦР.Напротив, культура не смогла обнаружить H. paragallinarum после 3 дней хранения при 4 или -20°C (15).

    В целом, ПЦР HP-2 представляет собой значительный шаг вперед в диагностике инфекционного насморка. Хотя технология ПЦР изначально кажется сложной и дорогой, работа по валидации и оценке ПЦР HP-2 в Китае демонстрирует, что ее можно использовать и она может давать значительно лучшие результаты, чем традиционная культура в развивающихся странах.

    Серология

    Описан ряд тестов для обнаружения антител к H.paragallinarum у кур (5). Несмотря на такой диапазон тестов, широко используются только тесты HI. Несмотря на то, что был описан ряд тестов HI, недавно были признаны три основные формы тестов HI: простые, извлеченные и обработанные тесты HI (8). Полная информация о том, как выполнять эти тесты, доступна в другом месте (8). В этом разделе кратко и критически рассматриваются преимущества и недостатки трех тестов HI.

    Простой тест HI основан на целых бактериальных клетках серовара страницы A H.paragallinarum и свежие куриные эритроциты (21). Несмотря на простоту выполнения, этот HI-тест может обнаруживать антитела только к серовару А. Он широко используется для обнаружения антител как у инфицированных, так и у вакцинированных цыплят (5).

    Тест на экстрагированный HI основан на экстрагированных KSCN и обработанных ультразвуком клетках H. paragallinarum и фиксированных глутаральдегидом куриных эритроцитах (31). Этот извлеченный тест HI был подтвержден, главным образом, с использованием организмов Page 3 серовара C. Этот тест способен выявлять специфический гуморальный ответ у цыплят, вакцинированных сероваром C (31).Основным недостатком этого анализа является то, что большинство цыплят, инфицированных сероваром С, остаются серонегативными (40).

    Тест обработанного HI основан на обработанных гиалуронидазой цельных бактериальных клетках H. paragallinarum и фиксированных формальдегидом куриных эритроцитах (41). Извлеченный тест HI широко не использовался и не оценивался. Он использовался для обнаружения антител к сероварам A, B и C у вакцинированных цыплят, при этом только цыплята, вакцинированные сероваром A и C, давали высокие титры (39). Его также использовали для скрининга куриной сыворотки в Индонезии на наличие антител, возникающих при заражении сероваров А и С (33).

    Вакцинированные цыплята с титрами 1:5 или выше в простом или экстрагированном HI-тестах защищены от последующего заражения (31). Недостаточно знаний или опыта, чтобы сделать какие-либо обоснованные выводы о том, существует ли корреляция между титром и защитой для обработанного теста HI.

    Недавно описанный серологический тест представляет собой блокирующий иммуноферментный анализ (ИФА) на основе моноклональных антител (43).Показав очень хорошую специфичность и приемлемый уровень чувствительности, этот тест имеет несколько недостатков. Поскольку имеются только моноклональные антитела к сероварам Пейджа А и С, анализ может обнаружить антитела только к этим двум сероварам. Моноклональные антитела, составляющие основу анализов, коммерчески недоступны, что ограничивает доступ к анализам. Наконец, некоторые изоляты H. paragallinarum не реагируют с моноклональными антителами, и поэтому инфекции, связанные с этими изолятами, не могут быть обнаружены с помощью этих ИФА. В то время как около 49 японских изолятов серовара А и более 20 изолятов серовара А из других стран реагируют с моноклональными антителами серовара А (7, 9, 42), около 40% изолятов серовара А, исследованных на сегодняшний день в Аргентине и Бразилии, не реагируют ( 6, 34). Кроме того, изоляты серовара C-4 Куме, который был обнаружен только в Австралии и состоит всего из 13 изолятов (4), не реагируют с моноклональными антителами серовара C. Этот ELISA широко не оценивался, и нет данных о какой-либо корреляции между титром ELISA и защитой.Пониженная чувствительность ИФА к инфекциям, вызванным сероваром С, указывает на то, что этот тест следует использовать только в качестве стада (43).

    В целом выбор серологического теста на насморк зависит от серовара и предполагаемого использования, т. е. для выявления реакции на вакцинацию или инфекцию. Простой HI-тест (21) подходит как для инфекций, так и для вакцинаций, связанных с сероваром A, экстрагированные или обработанные HI-тесты (31, 41) подходят для вакцинаций, связанных с сероваром C, а обработанный HI-тест (41) подходит для инфекции, ассоциированные с сероваром C. Было проведено так мало работ по серологическим анализам инфекций или вакцин, связанных с сероваром B, что невозможно рекомендовать какой-либо тест.

    Ограничения, изложенные выше для тестов на HI, означают, что по-прежнему существует потребность в надежных, хорошо охарактеризованных серологических анализах. ИФА на основе моноклональных антител продемонстрировал потенциал этого формата для диагностики инфекционного насморка, и будущие исследования этого типа подхода, включая разработку новых панелей моноклональных антител, в частности, к серовару В Page 2 , могут помочь решить некоторые проблемы. текущих ИФА.

    Вакцины

    Коммерческие вакцины против инфекционного насморка, как правило, основанные на убитых H. paragallinarum , широко доступны во всем мире. Недавно был опубликован обширный обзор литературы по инактивированным вакцинам против инфекционного насморка (2). По этой причине в этом обзоре рассматриваются только два аспекта вакцин против инфекционного насморка.

    До недавнего времени большинство этих вакцин содержали только серовары Пейджа А и С. Эта концепция двухвалентной вакцины основывалась на убеждении, что серовар Пейджа В не является настоящим сероваром и что вакцины на основе сероваров А и С обеспечивают перекрестную защиту.Однако, поскольку в настоящее время убедительно показано, что серовар Page 3 B отличается от других, коммерческие трехвалентные вакцины теперь доступны от крупных международных производителей вакцин (22).

    В вакцинах возникает новая проблема — сравнение «местных» и «международных» вакцин. Крупные глобальные производители вакцин, как правило, основывают свои вакцины на стандартных, признанных во всем мире штаммах. Эти международные вакцины продаются по всему миру на том основании, что местные различия недостаточны для оправдания добавления или удаления штаммов.В последнее время ряд исследовательских групп, в том числе Bragg et al. в Южной Африке (11) и Terzolo et al. в Аргентине (35) предположили, что такие международные вакцины не обеспечивают защиту от местных вариантов H. paragallinarum . Необходимо провести окончательные испытания перекрестной защиты, чтобы определить, действительно ли «международные» вакцины не обеспечивают защиту от местных вариантов.

    ВЫВОДЫ

    В этом обзоре собраны литературные данные, подчеркивающие, что инфекционный ринит, который часто рассматривается как простое легкое заболевание верхних дыхательных путей кур в развитых странах, может быть гораздо более сложным заболеванием в развивающихся странах.Наши возможности по точной диагностике инфекционного ринита значительно расширились, в частности, валидация ПЦР HP-2. В других областях, таких как изучение «вариантных» организмов, демонстрирующих аберрантную потребность в факторах роста, и новых «вариантных» сероваров, мы теперь лучше осознаем, как мало у нас знаний. Необходима окончательная работа по изучению роли НАД-независимых форм H. paragallinarum в возможных неудачах вакцин. Точно так же существует необходимость в окончательной работе над тем, является ли серологически «вариант» H. paragallinarum связаны с неэффективностью вакцин.

    БЛАГОДАРНОСТЬ

    Я выражаю признательность птицеводческим предприятиям Австралии за щедрую поддержку, которая профинансировала большую часть работы по инфекционному насморку, выполненной с 1979 года в Научно-исследовательском институте животных. Финансирование, предоставленное в последние годы Австралийским центром международных сельскохозяйственных исследований (ACIAR), стало ключевой поддержкой, позволившей разработать и утвердить ПЦР-тест HP-2.

    Замечательные навыки ученых и техников, работавших в Лаборатории бактериологических исследований, легли в основу всей нашей работы по инфекционному насморку.

    ССЫЛКИ

    1. Amonsin A, Wellehan J F X, Li L-L, Vandamme P, Lindeman C, Edman M, Robinson R A, Kapur V. Молекулярная эпидемиология Ornithobacterium rhinotracheale . Дж. Клин Микробиол. 1997; 35: 2894–2898. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]2. Блэколл П. Дж. Вакцины против инфекционного насморка. World’s Poult Sci J. 1995; 51:17–26. [Google Академия]3. Blackall PJ, Eaves LE, Aus G. Серотипирование Haemophilus paragallinarum по схеме Пейджа: сравнение использования тестов агглютинации и торможения гемагглютинации. Авиан Дис. 1990; 34: 643–645. [PubMed] [Google Scholar]4. Блэколл П.Дж., Ивз Л.Е., Роджерс Д.Г. Предложение нового серовара и измененной номенклатуры для Haemophilus paragallinarum в схеме гемагглютинина Куме. Дж. Клин Микробиол. 1990; 28:1185–1187. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]5.Блэколл П.Дж., Мацумото М., Ямамото Р. Инфекционный ринит. В: Calnek BW, Barnes HJ, Beard CW, McDougald LR, Saif YM, редакторы. Болезни домашней птицы. 10-е изд. Эймс: Издательство государственного университета Айовы; 1997. С. 179–190. [Google Академия]6. Блэколл П.Дж., Силва Э.Н., Ямагути Ю., Иритани Ю. Характеристика изолятов птичьего гемофила из Бразилии. Авиан Дис. 1994; 38: 269–274. [PubMed] [Google Scholar]7. Blackall PJ, Yamaguchi T, Iritani Y, Rogers DG. Оценка двух моноклональных антител для серотипирования Haemophilus paragallinarum .Авиан Дис. 1990; 34: 861–864. [PubMed] [Google Scholar]8. Блэколл П.Дж., Ямамото Р. Инфекционный ринит. В: Суэйн Д.Э., редактор. Лабораторное руководство по выделению и идентификации возбудителей птиц. 4-е изд. Филадельфия, Пенсильвания: Американская ассоциация птичьих патологов; 1998. С. 29–34. [Google Академия]9. Blackall PJ, Zheng YZ, Yamaguchi T, Iritani Y, Rogers DG. Оценка панели моноклональных антител при подтипировании Haemophilus paragallinarum . Авиан Дис. 1991; 35: 955–959.[PubMed] [Google Scholar] 10. Боулз Р., Блэколл П.Дж., Терзоло Х.Р., Сандовал В.Е. Материалы X Конгресса Всемирной ветеринарной птицеводческой ассоциации. 1993. Оценка генетического разнообразия австралийских и зарубежных изолятов Haemophilus paragallinarum с помощью мультилокусного электрофореза ферментов; п. 146. [Google Академия]11. Bragg R R, Coetzee L, Verschoor J A. Изменения в встречаемости различных сероваров Haemophilus paragallinarum в Южной Африке: возможное объяснение неудач вакцинации. Onderstepoort J Vet Res. 1996; 63: 217–226. [PubMed] [Google Scholar] 12. Брэгг Р. Р., Грейлинг Дж. М., Вершур Дж. А. Выделение и идентификация НАД-независимых бактерий у кур с симптомами инфекционного насморка. Авиан Патол. 1997; 26: 595–606. [PubMed] [Google Scholar] 13. Chen X, Chen Q, Zhang P, Feng W, Blackall P J. Оценка ПЦР-теста для обнаружения Haemophilus paragallinarum в Китае. Авиан Патол. 1998; 27: 296–300. [PubMed] [Google Scholar] 14. Чен Х, Мифлин Дж. К., Чжан П., Блэколл П. Дж.Разработка и применение ДНК-зондов и ПЦР-тестов для Haemophilus paragallinarum . Авиан Дис. 1996; 40: 398–407. [PubMed] [Google Scholar] 15. Chen X, Song C, Gong Y, Blackall P J. Дальнейшие исследования по использованию теста полимеразной цепной реакции для диагностики инфекционного насморка. Авиан Патол. 1998; 27: 618–624. [PubMed] [Google Scholar] 16. Де Роза М., Друаль Р., Чин Р.П., Шивапрасад Х.Л., Уокер Р.Л. Инфекция Ornithobacterium rhinotracheale у производителей индеек. Авиан Дис.1996; 40:865–874. [PubMed] [Google Scholar] 17. Друаль Р., Бикфорд А.А., Чарльтон Б.Р., Купер Г.Л., Ченнинг С.Е. Инфекционный насморк у мясных цыплят в долине Сан-Хоакин в Калифорнии. Авиан Дис. 1990; 34: 1009–1016. [PubMed] [Google Scholar] 18. Hinz K-H, Kunjara C. Haemophilus avium , новый вид кур. Int J Syst Bacteriol. 1977; 27: 324–329. [Google Академия] 19. Хорр Ф.Дж., Патнэм М., Роу-Россманит С., Коуарт В., Мартин Дж. Отчет о клиническом случае. Инфекционный насморк у цыплят-бройлеров в Алабаме.1994. с. 42. . Материалы 43-й Западной конференции по болезням птицы. [Google Академия] 20. Horner R F, Bishop G C, Jarvis C J, Coetzer T H T. Независимая от NAD (V-фактор) и типичная инфекция Haemophilus paragallinarum у коммерческих цыплят: пятилетнее полевое исследование. Авиан Патол. 1995; 24: 453–463. [PubMed] [Google Scholar] 21. Иритани Ю., Сугимори Г., Катагири К. Серологический ответ на Haemophilus gallinarum у искусственно инфицированных и вакцинированных цыплят. Авиан Дис. 1977; 21:1–8.[PubMed] [Google Scholar] 22. Jacobs AAC, Cuenen W, Storm PK. Эффективность трехвалентной вакцины Haemophilus paragallinarum по сравнению с двухвалентными вакцинами. Вет микробиол. 1992; 32:43–49. [PubMed] [Google Scholar] 23. Куме К., Савата А., Накаи Т., Мацумото М. Серологическая классификация Haemophilus paragallinarum с системой гемагглютинина. Дж. Клин Микробиол. 1983; 17: 958–964. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]24. Мифлин Дж. К., Чен Х., Брэгг Р. Р., Велгемоед Дж. М., Грейлинг Дж. М., Хорнер Р. Ф., Блэколл П. Дж.Подтверждение того, что ПЦР можно использовать для идентификации как НАД-зависимых, так и НАД-независимых Haemophilus paragallinarum . Onderstepoort J Vet Res. 1999; 66: 55–57. [PubMed] [Google Scholar] 25. Мифлин Дж. К., Хорнер Р. Ф., Блэколл П. Дж., Чен Х., Бишоп Г. К., Морроу С. Дж., Ямагути Т., Иритани Ю. Фенотипическая и молекулярная характеристика независимого от V-фактора (НАД) Haemophilus paragallinarum . Авиан Дис. 1995; 39: 304–308. [PubMed] [Google Scholar] 26. Муахид М., Бисгаард М., Морли А.Дж., Маттерс Р., Мангейм В.Появление независимых от V-фактора (NAD) штаммов Haemophilus paragallinarum . Вет микробиол. 1992; 31: 363–368. [PubMed] [Google Scholar] 27. Mutters R, Piechulla K, Hinz K-H, Mannheim W. Pasteurella avium (Hinz and Kunjara 1977) греб. ноябрь и Pasteurella volantium sp. ноябрь Int J Syst Bacteriol. 1985; 35: 5–9. [Google Академия] 28. Одор Э. М., Салем М., Поуп С. Р., Образец Б., Примм М., Вэнс К., Мерфи М. Выделение и идентификация Ornithobacterium rhinotracheale из коммерческих бройлерных стад на полуострове Делмарва.Авиан Дис. 1997; 41: 257–260. [PubMed] [Google Scholar] 29. Страница L A. Haemophilus инфекций у кур. 1. Характеристики 12 изолятов Haemophilus , выделенных от больных кур. Am J Vet Res. 1962; 23: 85–95. [PubMed] [Google Scholar] 30. Sandoval V E, Terzolo HR, Blackall P J. Осложненные случаи инфекционного насморка в Аргентине. Авиан Дис. 1994; 38: 672–678. [PubMed] [Google Scholar] 31. Савата А., Куме К., Накасе Ю. Гемагглютинин Haemophilus paragallinarum организмов серотипа 2: возникновение и иммунологические свойства гемагглютинина.Am J Vet Res. 1982; 43: 1311–1314. [PubMed] [Google Scholar] 32. Шриниваса К.С., Редди П.К., Аруна Д. Заболеваемость домашней птицы в округе Курнул (А.П.) Советник по птицеводству. 1989; 22:45–48. [Google Академия] 33. Такаги М., Такахаши Т., Хираяма Н., Истиананингси, Мариана С., Заркаси К., Огата М., Охта С. Исследование инфекционного насморка кур в Индонезии. J Vet Med Sci. 1991; 53: 637–642. [PubMed] [Google Scholar] 34. Terzolo HR, Paolicchi FA, Sandoval VE, Blackall PJ, Yamaguchi T, Iritani Y. Характеристика изолятов Haemophilus paragallinarum из Аргентины.Авиан Дис. 1993; 37: 310–314. [PubMed] [Google Scholar] 35. Terzolo HR, Sandoval VE, Gonzalez Pondal F. Оценка инактивированных вакцин против инфекционного насморка у цыплят, зараженных штаммами серовара B Haemophilus paragallinarum . Авиан Патол. 1997; 26: 365–376. [PubMed] [Google Scholar] 36. Титисак В., Джанвириясопак О., Моррис Р. С., Шрихаким С., Крюденер Р. В. Материалы 5-го Международного симпозиума по ветеринарной эпидемиологии и экономике. 1988. Причины смерти, обнаруженные при эпидемиологическом исследовании местных кур в тайских деревнях; стр.200–202. [PubMed] [Google Scholar] 37. Vandamme P, Segers P, Vancanneyt M, Van Hove K, Mutters R, Hommez J, Dewhirst F, Paster B, Kersters K, Falsen E, Devriese L A, Bisgaard M, Hinz KH, Mannheim W. Ornithobacterium rhinotracheale gen. ноябрь, сп. nov., выделенный из дыхательных путей птиц. Int J Syst Bacteriol. 1994; 44:24–37. [PubMed] [Google Scholar] 38. Ван Эмпель П., Ван Ден Бош Х., Гувертс Д., Сторм П. Экспериментальное заражение индеек и кур Ornithobacterium rhinotracheale .Авиан Дис. 1996;40:858–864. [PubMed] [Google Scholar] 39. Ямагучи Т., Блэколл П.Дж., Такигами С., Иритани Ю., Хаяши Ю. Иммуногенность штаммов серовара B Haemophilus paragallinarum . Авиан Дис. 1991; 35: 965–968. [PubMed] [Google Scholar]40. Yamaguchi T, Iritani Y, Hayashi Y. Серологический ответ цыплят, вакцинированных или искусственно инфицированных Haemophilus paragallinarum . Авиан Дис. 1988; 32: 308–312. [PubMed] [Google Scholar]41. Ямагути Т., Иритани Ю., Хаяши Ю.Гемагглютинирующая активность и иммунологические свойства полевых изолятов Haemophilus paragallinarum в Японии. Авиан Дис. 1989; 33: 511–515. [PubMed] [Google Scholar]42. Yamaguchi T, Kato K, Takigami S, Iritani Y, Hayashi Y. Серологическая классификация японских изолятов Haemophilus paragallinarum с использованием двух сероваров-специфических моноклональных антител. Авиан Дис. 1990; 34: 364–368. [PubMed] [Google Scholar]43. Чжан П., Блэколл П.Дж., Ямагути Т., Иритани Ю. Моноклональное антитело, блокирующее ELISA, для обнаружения специфичных к серовару антител к Haemophilus paragallinarum .Авиан Дис. 1999; 43:75–82. [PubMed] [Google Scholar]

    сельскохозяйственных животных | Здоровые домашние животные, здоровые люди

    Грипп или «грипп» — это заразное респираторное заболевание, вызываемое вирусами гриппа. Некоторые вирусы гриппа, которые в основном циркулируют среди животных, в редких случаях заражают людей. Например, некоторые вирусы птичьего гриппа (птичьего гриппа), а также некоторые вирусы свиного гриппа могут вызывать инфекции у людей. Когда вирусы гриппа, которые обычно циркулируют среди животных, вызывают инфекцию у людей, это называется «новой» вирусной инфекцией.Известно, что не все вирусы гриппа, обнаруженные у птиц или свиней, вызывают инфекции у человека.

    Способ распространения: Вирусы гриппа очень заразны. Большинство экспертов считают, что вирусы гриппа распространяются в основном воздушно-капельным путем, когда больные гриппом кашляют, чихают или разговаривают. Эти капли могут попасть в рот или нос людей, которые находятся поблизости, или, возможно, попасть в легкие. Люди также могут заражать друг друга гриппом. Значок птичьего pdf[PDF — 2 страницы] и свиной pdf icon[PDF — 2 страницы] грипп может передаваться людям при контакте с вирусом через слюну, выделения из носа или экскременты инфицированных животных. Человек также может заразиться гриппом при контакте с зараженными вирусом поверхностями, птичниками, загонами для свиней и предметами снабжения. Реже грипп также может передаваться людям через прикосновение к зараженным животным, а затем к глазам, носу или рту.

    Кто находится в группе риска: Птичий или свиной грипп редко передается людям. Заболеть гриппом может любой, но дети младше 5 лет, беременные женщины, люди старше 65 лет и люди с ослабленной иммунной системой подвержены высокому риску серьезных осложнений гриппа.Люди, которые работают в тесном контакте с большим количеством птиц и свиней, например, птицеводы или свиноводы, подвергаются риску заражения, если их животные заражены. Любой человек с высоким риском серьезных осложнений гриппа, планирующий посетить сельскохозяйственную ярмарку или ферму, где присутствуют свиньи, должен избегать тесного контакта со свиньями и свинарниками, в том числе свиноводами и членами семей с высокими факторами риска.

    Признаки у сельскохозяйственных животных: Как птицы, так и свиньи могут быть заражены вирусами гриппа без проявления симптомов. Если они заболевают, стада домашней птицы могут страдать от целого ряда болезней, от снижения яйценоскости до чрезвычайно высокой смертности. Симптомы у свиней могут включать лихорадку, депрессию, кашель, выделения из носа или глаз, чихание, затрудненное дыхание, покраснение или воспаление глаз и отсутствие аппетита.

    Симптомы у людей: При птичьем и свином гриппе у инфицированных людей могут быть симптомы, сходные с сезонным человеческим гриппом, такие как лихорадка, утомляемость, отсутствие аппетита и кашель.У них также могут быть красные глаза, тошнота, боль в животе, диарея и рвота. У некоторых людей могут возникать серьезные осложнения гриппа, такие как воспаление сердечной (миокардит), мозговой (энцефалит) или мышечной (миозит, рабдомиолиз) тканей и полиорганная недостаточность (например, дыхательная и почечная недостаточность).

    болезней индеек - St David's Poultry Team

    черви

    Существует две группы гельминтов, поражающих индеек: анкилостомы, обитающие в трахее (дыхательном горле) птицы и вызывающие удушье (эти гельминты чрезвычайно редки), и кишечные гельминты. Существует три вида кишечных червей: Capillaria, Ascaridia и Heterakis.

    Капиллярии (волосатики) — самые маленькие из этих червей (до 2,5 см в длину) и могут обитать в любой части пищеварительного тракта от зоба до кишечника. Эти черви являются самыми вредными из кишечных червей.

    Черви Ascaridia живут в тонком кишечнике, и, хотя они самые крупные из червей (до 12 см в длину), они, как правило, вызывают лишь умеренное повреждение и воспаление.

    Heterakis — это маленький червь (приблизительно 2 см в длину), живущий в слепой кишке (слепой кишке).Хотя червь сам по себе безвреден, он может переносить червя (паразит, который переносится червем и вызывает повреждение печени и диарею у индеек, что часто приводит к внезапной смерти).

    Обратите внимание, что это распространенное заблуждение, что только индюки на свободном выгуле могут заразиться червями.

    Клинические признаки глистов включают:

    • Потеря веса.
    • Тупость.
    • Отсутствие яйценоскости (у племенной птицы).
    • Легкая диарея.

    Диагностика

    Подсчет фекальных яиц глистов — лучший способ определить количество гельминтов в стаде. Это снижает потребность в ненужных гельминтозах.

    Лечение

    Flubenvet в настоящее время является единственным лицензированным антигельминтным средством для индеек, и его следует давать с кормом ежедневно в течение одной недели.

    Профилактика

    Либо проводите регулярную дегельминтизацию птиц с помощью Flubenvet каждые 10 недель (начиная примерно через 2 недели после выпуска на выгул), либо, в качестве альтернативы, раз в 10 недель берите пробы птичьего помета, чтобы избежать ненужной борьбы с глистами..

    По возможности постарайтесь переместить свой пастбище, чтобы предотвратить скопление яиц червей на пастбище.

    Примечание: Никогда не выпускайте индеек рядом с цыплятами или на пастбище, где находились цыплята, так как индюки чрезвычайно восприимчивы к угрям и легко погибнут.

     

    Угорь

    Blackhead вызывается одноклеточным паразитом под названием Histomonas Meleagridis. Угорь переносится относительно безвредным слепым червем ( Heterakis ). Яйца червей Heterakis могут переноситься дождевыми червями, которые могут жить до 12 лет. Черная голова поражает кур, горохов и индеек, но индейки и горох более уязвимы для инфекции, чем куры. Когда индюки проглатывают яиц червя Heterakis , инфицированных угрями, угри появляются в кишечнике и проникают в стенку слепой кишки, вызывая воспаление и диарею. Затем паразит мигрирует через брюшную полость в печень, в результате чего паразит проникает в печень, вызывая серьезные повреждения и, как правило, смерть.

    На что обратить внимание

    • Внезапная смерть.
    • Тупость.
    • Ярко-желтая диарея.
    • В очень исключительных случаях у птиц появляется голова черного цвета.

    Диагностика

    Единственный способ правильно диагностировать угрей — это патологоанатомическое исследование.

    Лечение

    Поскольку Эмтрил был запрещен, все методы лечения направлены на предотвращение вторичных бактериальных инфекций.Очень важно, чтобы птицы, зараженные угрями, были подвергнуты гельминтизации, чтобы убить червей Heterakis, которые могут быть переносчиками угрей.

    Орегано (Виовит) широко используется в индустрии несушек для снижения вероятности заражения черными точками.

    Профилактика

    Обеспечьте регулярную дегельминтизацию индеек.

    Никогда не позволяйте индюкам или гороху гулять с цыплятами или на земле, где цыплята паслись в течение последних десяти лет.

     

    Хромота  

    Наиболее частой причиной хромоты у индеек является инфекция Mycoplasma , которая может передаваться несколькими путями; через воздух, через яйцо и через спаривание.

    В большинстве случаев Mycoplasma вызывает опухание суставов ног. Микоплазма также может вызывать респираторные заболевания.

    На что обратить внимание

    • Хромота.
    • Опухшие суставы.
    • Чихание.
    • Опухшие носовые пазухи.
    • Тупость.

    Диагностика

    Анализы крови или ПЦР-тестирование являются наиболее распространенными методами диагностики.

    Лечение

    Антибиотики рекомендуются для контроля над инфекцией.Однако лечение только временно улучшит клинические признаки и не избавит пораженных птиц от болезни навсегда. Таким образом, у инфицированных индеек могут появиться клинические признаки в более позднем возрасте.

    Профилактика

    • Профилактика основана на недопущении болезни.
    • Покупайте индюшат и других птиц только у проверенных поставщиков.
    • Старайтесь по возможности отпугивать диких птиц, строго ограничивая их доступ к корму.
    • Обеспечьте хороший режим очистки между партиями.Вымойте навес с хорошим моющим средством (например, Cling 2), дайте навесу высохнуть, затем нанесите дезинфицирующее средство широкого спектра действия, такое как TAD CID или Interkokask.

    Геморрагический энтерит

    Геморрагический энтерит – это состояние, вызываемое аденовирусом, который поражает в основном молодых индюков в возрасте 6–12 недель, вызывая кровавый понос и при отсутствии лечения смерть.

    На что обратить внимание

    • Мрачность
    • диарея (часто с кровью)
    • внезапная смерть

    Диагностика

    Кровавый понос у индеек в высокой степени свидетельствует о геморрагическом энтерите, но для подтверждения подозрения можно использовать анализ крови.

    Лечение

    В большинстве случаев антибиотики назначают для контроля вторичных бактериальных инфекций.

    Профилактика

    Необходим хороший режим очистки между партиями. Вымойте навес с хорошим моющим средством (например, Cling 2), дайте навесу высохнуть, затем нанесите дезинфицирующее средство широкого спектра действия, такое как TAD CID или Interkokask.

    Доступна вакцинация.

     

    Респираторные заболевания  

    Основными причинами респираторных заболеваний у индеек являются микоплазма и вирус птичьего ринотрахеита (ВРТ).Часто эти агенты встречаются вместе.

    Микоплазма может передаваться при спаривании, по воздуху и может передаваться от курицы к цыпленку. Микоплазма может вызывать насморк, отек лица и инфекции суставов, приводящие к хромоте. Важно отметить, что микоплазма переносится птицей на всю жизнь и остается бездействующей с незначительным ущербом, однако она может вспыхнуть во время стресса.

    АРТ/ТЗТ — это вирусная инфекция, которая может возникать с микоплазмой.АРТ вызывает насморк и отек лица. ВРТ передается по воздуху или через зараженные предметы, такие как грязная обувь или оборудование.

    На что обратить внимание

    • чихание/чихание
    • слезящиеся глаза
    • выделения из носа
    • хромота/опухание суставов

    Лечение

    В легких случаях птицы выздоравливают. Однако, если птицы кажутся вялыми или их состояние не улучшается, вероятно, потребуются антибиотики.

    Профилактика

    • Покупайте цыплят только у проверенных поставщиков
    • Доступна вакцинация против АРТ/ЗТТ
    • Обеспечьте хорошую вентиляцию птиц

     

    Кокцидиоз

    Кокцидиоз вызывается одноклеточным паразитом, который проникает в клетки кишечника индейки для размножения. Паразит разрушает клетки, выстилающие стенку кишечника, что приводит к повреждению. Степень повреждения будет зависеть от того, сколько яиц кокцидий (ооцист) съедено, что, в свою очередь, будет зависеть от того, насколько окружающая среда загрязнена ооцистами.

    Это повреждение снижает способность кишечника усваивать питательные вещества, что приводит к потере веса и диарее. Поврежденный кишечник позволяет вредным бактериям размножаться, вызывая вторичную бактериальную диарею, а в тяжелых случаях они могут попасть в кровь, вызывая заражение крови.

    Яйца кокцидиоза (ооцисты) имеют очень толстую стенку и поэтому могут годами сохраняться в окружающей среде. Ооцисты могут быть устойчивы ко многим дезинфицирующим средствам, поэтому убедитесь, что ваше дезинфицирующее средство лицензировано против кокцидиоза.

    Примечание: Кокцидиальные виды, поражающие кур и индеек, различаются. Они не могут заразить друг друга, но если вы держите кур и индеек вместе, если условия подходят для того, чтобы кокки могли заселить ваших цыплят, тогда условия будут идеальными для тех видов кокков, которые заражают ваших индеек.

    Какие птицы подвержены риску

    Индейки будут собирать яйца с фекалий и подстилки. Когда они подвергаются воздействию кокцидиоза, у них вырабатывается иммунитет против него (с клиническими признаками или без них, в зависимости от количества потребляемых ими ооцист).Птицы, впервые соприкасающиеся со своим пометом, например, индюшата в возрасте от 2 недель до 2 месяцев, не имеют иммунитета и поэтому уязвимы.

    На что обратить внимание

    • тупые, сгорбленные птицы с взъерошенными перьями
    • внезапная смерть
    • диарея (часто водянистая и может содержать слизь) – кровь встречается редко по сравнению с куриным кокцидиозом

    Диагностика

    Для диагностики кокцидиоза можно использовать либо анализ кала, либо патологоанатомическое исследование.

    Лечение

    Лечение включает использование антикокцидийных препаратов, таких как ампролиум или байкокс, для борьбы с кокцидиозом, а также применение антибиотиков для борьбы с вторичными бактериальными инфекциями.

    Профилактика

    Необходим хороший режим очистки между партиями. Вымойте навес с хорошим моющим средством (например, Cling 2), дайте навесу высохнуть, затем нанесите лицензированное антикокцидийное дезинфицирующее средство, такое как Interkokask. Кокцидиоз устойчив ко многим дезинфицирующим средствам — если на этикетке дезинфицирующего средства прямо не указано, что оно уничтожает кокцидиоз, следует предположить, что оно не уничтожит кокцидиоз.

    Кокцидиостатики могут быть включены в корм, но их нельзя давать пожилым индейкам, так как они могут быть отравлены кокцидиостатиками, вызывающими мышечный паралич.

     

    Диарея

    Причина(ы)

    Диарея у индеек может быть вызвана рядом вредных агентов, включая бактерии, вирусы (например, вирус геморрагического энтерита) и кокцидиоз. Эти агенты повреждают стенку кишечника и могут вызывать снижение всасывания питательных веществ, что приводит к потере веса и уменьшению количества воды, поглощаемой кишечником, что приводит к обезвоживанию.В зависимости от причины диарея может быть заразной для других птиц.

    Некачественный корм или чрезмерные/неподходящие лакомства также могут привести к диарее.

    Грязная питьевая вода может содержать большое количество бактерий, вызывающих диарею – чистая питьевая вода необходима. Со временем количество бактерий в ваших линиях поилок будет увеличиваться, особенно после использования витаминов или в теплую погоду. Эти бактерии могут вызвать приступ диареи. Линии поилок должны быть продезинфицированы дезинфицирующим средством для воды с перекисью водорода при капитальном ремонте, например, Aqua Clean.Низкую дозу Aqua Clean можно безопасно давать индейкам в воде, и это следует давать один раз в неделю или после приема витаминов или лекарств.

    На что обратить внимание

    • Влажная подстилка.
    • Свободный помет.
    • Потеря веса.
    • Тусклые сгорбленные птицы с взъерошенными перьями.
    • Вклеенные вентиляционные отверстия.

    Лечение

    Если вы обеспокоены тем, что у ваших индюков диарея, обратитесь к ветеринару или отправьте образец фекалий ( Ссылка на образец фекалий ), чтобы исключить наличие глистов или кокцидиоз.В качестве альтернативы для диагностики можно использовать патологоанатомическое исследование любой свежей мертвой или больной птицы. Образцы воды также можно брать из поилок, чтобы убедиться, что в питьевой воде ваших птиц нет высокого уровня бактерий. Тяжелые инфекции могут потребовать антибактериальной терапии.

    Профилактика

    • Убедитесь, что корм чистый, сухой и годный к употреблению.
    • Обеспечьте наличие чистой питьевой воды.
    • Поддерживайте постельное белье в чистоте и сухости, регулярно меняя постельное белье.
    • Рассмотрите возможность использования органических кислот и пробиотиков.

     

    Семена кормовых сорняков

    Индейки могут страдать энтеритом, а на некоторых фермах он может протекать в тяжелой форме с синдромом энтерита индюшат, что приводит к задержке роста и сильной диарее. Однако на многих фермах симптомы намного мягче, и основная проблема заключается в воздействии едкого помета на подушечки лап, что может привести к хромоте и проблемам с самочувствием. Использование соломы в качестве подстилки для птиц традиционного производства имеет много преимуществ, но как продукт она плохо впитывает жидкости, а фекалии имеют тенденцию скапливаться на поверхности подстилки, что влияет на качество кожи и общее состояние здоровья птицы.

    Традиционное лечение мокрой подстилки и диареи включает антибиотики, обычно растворенные в воде. Хотя это часто эффективно, существует риск того, что «дружественные» бактерии будут уничтожены так же, как и «вредные». «Пространство», образовавшееся в кишечнике из-за потери «дружественных» бактерий, может быть занято бактериями, которые с большей вероятностью вызывают заболевание и устойчивы к антибиотикам. С рождественскими индейками мы стремимся производить птицу высокого качества, прошедшую минимальную обработку антибиотиками (это соответствует изображению «Farm Fresh Free Range Image»).Для органических индеек определенное состояние, такое как диарея, можно вылечить только один раз, иначе индейки больше не могут быть классифицированы как органические. Терапия, альтернативная антибиотикам, широко используется при выращивании бройлеров, и аналогичные подходы могут использоваться при выращивании индеек, где диарея или дерматит подушечек лап являются исторической проблемой.

    Необходимо учитывать три основные области. Во-первых, цель состоит в том, чтобы улучшить среду кишечника, чтобы стимулировать «дружественные» бактерии и препятствовать «вредным» бактериям.Птица обычно получает свои кишечные бактерии от своей матери, но с современными системами инкубатория это невозможно, и первые бактерии, с которыми вступает в контакт индюшата, могут быть штаммами, присутствующими в инкубатории. Недавняя работа предполагает, что бактерии развиваются в кишечнике птицы до того, как она вылупится, и эти бактерии, должно быть, произошли от матери или ее окружения. Конечно, проблема возникает, когда мы лечим раннюю смертность цыплят антибиотиками и оказываем негативное влияние на эти бактерии

    Для развития правильной микрофлоры кишечника мы предлагаем:                  

    Семена кишечника

    План состоит в том, чтобы запустить кишечную экосистему птиц с помощью стартового набора натуральных бактерий из индеек.На рынке представлены различные продукты, но мы предпочитаем продукт, произведенный в Германии из индеек и содержащий бактерии Lactobacillus, которые формируют большинство бактерий в кишечнике в первые 20 дней. Этот продукт следует давать после однодневных родов в течение 5 дней или после лечения антибиотиками с целью повторного заселения кишечника. Это не дорого и дается по 3-5 часов в день в воде. Следующий этап:

    Подкормка и прополка бактерий

    В целом, бактерии, которые мы хотим поощрять, — это бактерии, любящие кислоту, а не щелочные типы, такие как E.coli и клостридии. Поэтому нам необходимо поставлять (короткоцепочечные) жирные кислоты в воду или корм. Эти жирные кислоты с короткой цепью питают «хорошие» бактерии, любящие кислоту, в то же время отпугивая (отсеивая) «вредные» бактерии.

    Очищая воду, мы также уменьшаем количество бактерий в воде, но есть риск образования биопленки (слизеподобного вещества, вырабатываемого бактериями для защиты от высыхания и дезинфицирующих средств), поэтому мы должны быть уверены, что система водоснабжения чистая.Обработка водой с большим успехом применялась на многих индейках. Небольшими партиями можно использовать такие продукты, как Ultimate acid, в воде по цене около 3 фунтов стерлингов для обработки 1000 литров. Мы можем настроить графики обработки линий на разные периоды времени в зависимости от проблем фермы

    Общий план Seed Feed Weed (SFW) с большим успехом был реализован на многих фермах по разведению индеек и бройлеров и не требует больших затрат. Это требует внимания к деталям, и мы, как практика, стали пионерами в Великобритании.Для получения дополнительной информации, пожалуйста, свяжитесь с любым ветеринаром или выездным персоналом

     

    Сальмонелла

    Хотя инфекции сальмонеллы обычно не опасны для самих индеек, с точки зрения здоровья человека сальмонелла очень важна. Для разведения индюков и мясных индюков в стадах более 250 голов требуется тестирование на сальмонеллез. Если мясные индейки продаются на месте в мясные лавки или у ворот фермы, тестирование не требуется. Тестирование проводится с использованием двух пар тампонов для обуви на группу индюков, которые представляют собой сетку для волос, похожую на чехлы, надевающиеся на ваши ботинки, когда вы ходите по сараю. Они отправляются во внешнюю лабораторию для тестирования. Образцы должны быть взяты в течение трех недель после убоя.

     

    Обработка клюва 

    Обработка клюва у цыплят необходима в некоторых случаях. Это должно выполняться обученным оператором до того, как индюшатам исполнится 21 день. Мы можем облегчить боль вашим индюшатам, когда им лечат клюв.

     

    Разрыв аорты 

    Быстрорастущие олени могут страдать от разрыва основного кровеносного сосуда (аорты), который выходит из сердца.В таких случаях птица истечет кровью. Наши сотрудники могут дать рекомендации по замедлению темпов роста ваших индюшат, чтобы уменьшить вероятность разрыва аорты.

     

    Рожистое воспаление

    Рожистое воспаление – это бактерия, живущая в почве. Он может попасть в кровоток ваших индеек через раны. В тяжелых случаях инфекция вызывает внезапную смерть, а в менее тяжелых случаях может привести к слабому росту и хромоте.

    На что обратить внимание

    • Хромота.
    • Внезапная смерть.
    • Сгорбленные индюшата с взъерошенными перьями.

    Диагностика

    Диагноз ставится на основании мазков, взятых при патологоанатомическом исследовании.

    Лечение

    Курс антибиотиков – лучшее лечение рожистого воспаления.

    Профилактика

    Вакцинация — лучший метод профилактики рожистого воспаления

    Никогда не держите домашнюю птицу на земле, на которой находились свиньи, так как они могут быть переносчиками рожистого воспаления.

     

    границ | Риски, связанные с использованием энрофлоксацина против Salmonella Enteritidis или Salmonella Heidelberg в коммерческой птицеводстве

    Введение

    Фторхинолоны представляют собой третье поколение разработки хинолонов. Налидиксовая кислота и пипемидиновая кислота являются примерами первого поколения и в настоящее время обладают ограниченной активностью против грамотрицательных бактерий. Фторированные 4-хинолоны были представлены на рынке в 1980-х годах и были передовыми антибиотиками, предлагая широкий спектр активности и высокую эффективность при широком спектре инфекций как перорально, так и парентерально (1, 2).Тем не менее, история показала, что широкое использование новых антибиотиков в конечном итоге омрачается появлением устойчивости к этим химическим веществам, что стало серьезной глобальной проблемой. Это было продемонстрировано более высокой заболеваемостью сальмонеллами и инфекциями Campylobacter во всем мире, а также несколькими сообщениями об устойчивости клинических изолятов к фторхинолонам для этих и других кишечных патогенов (3–7). Таким образом, Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) опубликовала список антибиотиков, которые должны быть зарезервированы только для использования человеком (8), и фторхинолоны были среди них из-за тревожных данных о устойчивых к хинолонам зоонозных патогенах.Вскоре после публикации отчета ВОЗ несколько стран запретили использование фторхинолонов в животноводстве (9–11). В условиях растущего давления со стороны потребителей и научных кругов Европейский союз пошел еще дальше, приняв новое законодательство, запрещающее использование всех антибиотиков в качестве стимуляторов роста с января 2006 г. (12). Однако во многих странах неизбирательное и неправильное использование антибиотиков, в том числе фторхинолонов, по-прежнему является печальной реальностью. Особенно в странах, где нет законодательства, регулирующего использование фторхинолонов в животноводстве, и где имеется изобилие дженериков фторхинолонов по низкой цене.Типичная практика управления в этих странах заключается в том, чтобы лечить или давать здоровым новорожденным цыплятам и индюшатам пятикратную рекомендуемую дозу энрофлоксацина в течение пяти дней подряд с питьевой водой. Интересно, что в этих странах заболеваемость Salmonella spp. и Campylobacter spp. показатели как среди людей, так и в сельском хозяйстве также высоки (1, 13–16). Таким образом, целью настоящего исследования было оценить и подтвердить риски, связанные с использованием энрофлоксацина для Salmonella enterica сероваров Enteritidis или Heidelberg в промышленной птице, а также определить, имеют ли пробиотики, выбранные для домашней птицы, профилактический эффект при заражении птиц SE. и Ш.

    Материалы и методы

    Энрофлоксацин

    Байтрил ® (Bayer Health Care LLC, Mission, KS 66201, США) Энрофлоксацин 3,23% раствор-концентрат для использования только в питьевой воде цыплят и индеек.

    Пробиотическая культура

    FloraMax ® -B11 (Pacific Vet Group USA Inc., Fayetteville, AR 72703, США) представляет собой определенную пробиотическую культуру, полученную из желудочно-кишечного тракта домашней птицы, которая содержит патентованные штаммы молочнокислых бактерий (LAB), отобранные в соответствии с их in vitro. способность ингибировать энтеропатогены (17).

    Животный источник

    В день вылупления цыплята-бройлеры-самцы были получены от Cobb-Vantress (Силоам-Спрингс, Арканзас, США) для эксперимента 1 или индюшата-самцы из местного инкубатора для эксперимента 2 и были случайным образом помещены в отапливаемые брудерные батареи в контролируемом возрасте -подходящее окружение. В каждом эксперименте птицам предоставляли свободный доступ к воде и немедикаментозную кукурузно-соевую диету, соответствующую пищевым потребностям домашней птицы, рекомендованным Национальным исследовательским советом (18) соответственно. Все процедуры обращения с животными проводились в соответствии с Институциональным комитетом по уходу и использованию животных Университета Арканзаса. В каждом эксперименте небольшое количество цыплят или индюшат ( n = 10) гуманно умерщвляли по прибытии путем удушения CO 2 . Слепо-слепые миндалины (CCT), печень и селезенку культивировали в асептических условиях в обогащенном тетратионатом бульоне (каталожный номер 210420, Becton Dickinson, Sparks, MD, USA). Обогащенные образцы были подтверждены как отрицательные в отношении Salmonella путем посева образцов на ксилозу-лизин-тергитол-4 (XLT-4, номер по каталогу223410, селективная среда BD Difco™).

    Бактериальные штаммы и культуральные условия

    Контрольный микроорганизм, использованный в эксперименте 1, представлял собой изолят домашней птицы Salmonella enterica серовара Enteritidis (SE), бактериофага типа 13A, полученный из лаборатории Национальной ветеринарной службы Министерства сельского хозяйства США, Эймс, Айова, США. В эксперименте 2 использовали первичный изолят домашней птицы Salmonella enterica серовара Heidelberg (SH), выделенный в нашей лаборатории. Тест на чувствительность к противомикробным препаратам показал, что оба изолята были чувствительны к энрофлоксацину.Кроме того, SE и SH устойчивы к 25 мкг/мл новобиоцина (NO, каталожный № N-1628, Sigma) и были отобраны по устойчивости к 20 мкг/мл налидиксовой кислоты (NA, каталожный № N-4382, Sigma). ) в нашей лаборатории. Для обоих экспериментов 100 мкл SE или SH из замороженной аликвоты добавляли к 10 мл триптического соевого бульона (каталожный № 22092, Sigma) и инкубировали при 37°C в течение 8 ч, и пропускали три раза через каждые 8 ​​ч, чтобы убедиться, что что все бактерии находились в логарифмической фазе. После инкубации бактериальные клетки трижды промывали стерильным 0.9% физиологический раствор путем центрифугирования при 1864 × g в течение 10 минут, восстановленный в физиологическом растворе, количественный анализ с помощью денситометрии с помощью спектрофотометра (Spectronic 20D+, Spectronic Instruments Thermo Scientific) и разбавленный до приблизительной концентрации 10 8 КОЕ/мл. Концентрации SE или SH дополнительно проверяли путем серийного разведения и посева на агар с бриллиантовым зеленым (BGA, № по каталогу 70134, Sigma) с NO и NA для подсчета фактических КОЕ, используемых для заражения цыплят и индеек.

    Экспериментальный дизайн на цыплятах и ​​индейках

    Оценка энрофлоксацина у новорожденных цыплят, инфицированных
    Salmonella Enteritidis. эксперимент 1

    Было проведено два независимых исследования. В каждом испытании 36 цыплят случайным образом распределяли в одну из трех групп ( n = 12): контрольная SE, зараженная без энрофлоксацина; энрофлоксацин 25 мг/кг SE контрольного заражения; и энрофлоксацин 50 мг/кг SE контрольного заражения. Цыплята получали энрофлоксацин с 1-го по 5-й день жизни с питьевой водой.На 6-й день обработанные группы получали пресную воду без какой-либо обработки. Контрольным цыплятам на протяжении всего эксперимента давали пресную воду без антибиотика. Всем цыплятам через рот вводили 10 7 КОЕ/цыпленок SE в возрасте 7 дней. Цыплят гуманно умерщвляли для культивирования в возрасте 8 дней, как описано ниже.

    Сальмонелла Восстановление

    Через 8 дней бройлеров гуманно умерщвляли, а печень и селезенку собирали в асептических условиях и добавляли 10 мл тетратионатного бульона (Becton Dickinson) в течение ночи при 37°C.После обогащения каждый образец подвергали выделению штрихами на пластинах BGA, содержащих 25 мкг/мл NO и 20 мкг/мл NA. Планшеты инкубировали при 37°С в течение 24 ч и исследовали на наличие или отсутствие устойчивых к антибиотикам СЭ. CCT собирали в асептических условиях, гомогенизировали в стерильных пакетах для образцов (Nasco, Форт-Аткинсон, Висконсин, США) с помощью резинового молотка и разбавляли физиологическим раствором (1:4 по массе/объему), а 10-кратные разведения высевали на BGA с NO и NA. , инкубировали при 37°C в течение 24 ч для подсчета общего количества колониеобразующих единиц SE.Образцы CCT были обогащены 2-кратным концентрированным бульоном для обогащения тетратионатом и дополнительно инкубированы при 37 ° C в течение 24 часов для обогащения. После этого обогащенные образцы высевали на BGA с NO и NA и инкубировали при 37°C в течение 24 часов для подтверждения наличия/отсутствия типичных лактозо-отрицательных колоний Salmonella .

    Оценка профилактического введения FloraMax-B11
    ® Энрофлоксацин новорожденным индюшатам, инфицированным Salmonella Heidelberg.эксперимент 2

    В Эксперименте 2 72 индюшата дня вылупления были помечены на шее, взвешены и случайным образом распределены в одну из трех групп ( n = 24/группа): контрольная группа SH, зараженная без лечения; пробиотик SH, зараженный; и энрофлоксацин 50 мг/кг SH. Птенцы получали FloraMax-B11 ® или Энрофлоксацин с 1-го по 5-й день жизни в питьевой воде. Контрольная группа получала пресную воду без какой-либо обработки на протяжении всего эксперимента. На 6-й день обработанные группы получали воду без какой-либо обработки.Всем индюшатам через рот вводили 10 7 КОЕ/индюшат SH в возрасте 7 дней. Птенцов взвешивали и подвергали гуманной эвтаназии через 24 часа после заражения SH (8-й день возраста) для оценки концентрации в сыворотке флуоресцеинизотиоцианат-декстрана (FITC-D) и состава бактериального сообщества слепой кишки, как описано ниже, а также восстановления и посева Salmonella . от CCT, как было описано ранее. Образцы из CCT также высевали в Man Rogosa Sharpe (Difco™ Lactobacilli MRS Agar VWR, кат.

    -084 Suwanee, GA 30024) для оценки общего количества LAB.

    Определение утечки FITC-D в сыворотке

    Кишечная утечка FITC-D (молекулярная масса 3–5 кДа; Sigma-Aldrich Co., Сент-Луис, Миссури, США) и измерение его концентрации в сыворотке были выполнены в эксперименте 2 в качестве маркера парацеллюлярного транспорта и дисфункции слизистого барьера. (19–22). Через 24 часа после контрольного заражения SH (8-й день) цыплятам во всех группах вводили через зонд дозу FITC-D (4,16 мг/кг).Через 2,5 часа они были убиты удушением CO 2 . Образцы крови брали из бедренной вены, выдерживали при комнатной температуре в течение 3 ч и центрифугировали (500 × g в течение 15 мин) для отделения сыворотки от эритроцитов. Уровни FITC-D в разбавленных образцах сыворотки (1:5 PBS) измеряли при длине волны возбуждения 485 нм и длине волны излучения 528 нм с помощью многорежимного флуоресцентного считывателя микропланшетов Synergy HT (BioTek Instruments, Inc. , Вермонт, США). ). Затем измеренную флуоресценцию сравнивали со стандартной кривой с известными концентрациями FITC-D.Несостоятельность кишечника у каждой птицы выражали в микрограммах FITC-D/мл сыворотки (20).

    Экстракция ДНК и анализ разнообразия микробных сообществ с помощью люмината

    Содержимое слепой кишки было получено от шести индюшат, тщательно гомогенизировано в четырех объемах разбавителя (0,85% NaCl, 0,1% пептона), центрифугировано при 300 × g в течение 2 мин для удаления крупного мусора и, наконец, 0,5 мл аликвоты (в среднем 8 мг сухого веса) гранулировали в количестве 10 000 × г в течение 5 мин.Экстракцию ДНК проводили немедленно с использованием набора QIAamp DNA Stool Mini Kit (QIAGEN, Hilden, Germany). Составы бактериального сообщества на уровне типа и класса были получены с использованием секвенирования красителя Illumina (Era7 Bioinformatics Inc., Кембридж, Массачусетс 02142, США). Анализ соответствовал ампликонам 16S рРНК из региона V6, секвенированным с помощью технологии Illumina (23). Прочтения были отнесены к таксону на основе сходства последовательностей с генами 16S рРНК, извлеченными из базы данных нтов NCBI. Последовательности 16S рРНК были извлечены из NCBI на основании их присутствия в наборе последовательностей, включенных в проект рибосомной базы данных (RDP) (24), и на основе специфичности их таксономического отнесения на основе подхода наименьшего общего предка (LCA), принятого при метагеномном анализе. как последняя версия Meta-Genome Analyzer (MEGAN).Алгоритм был аналогичен алгоритму назначения, принятому инструментом MEGAN (25). Распределение по типам во всех выборках выражается в % от общего количества объединенных прочтений каждой выборки.

    Данные и статистический анализ

    Log 10 КОЕ/г SE и SH в содержимом слепой кишки, масса тела (BW), прибавка массы тела (BWG), концентрация FITC-D в сыворотке и пропорция бактериального состава были подвергнуты дисперсионному анализу как полностью рандомизированному проектирование с использованием процедуры общих линейных моделей SAS (26). Значительные различия между средними значениями были определены с помощью многодиапазонного критерия Дункана при P <0,05. Данные по обогащению выражали в виде положительных/всего цыплят (%), а процент восстановления SE и SH сравнивали с использованием критерия независимости хи-квадрат, проверяя все возможные комбинации для определения значимости ( P ≤ 0,05) для этих исследований. (27).

    Результаты

    Результаты эксперимента 1 по оценке влияния энрофлоксацина на новорожденных цыплят, зараженных СЭ через 24 часа после лечения антибиотиками, на инвазию органов и колонизацию слепой кишки, обобщены в таблице 1.В испытании 1 наблюдалось значительное ( P <0,05) увеличение частоты СЭ в печени и селезенке у цыплят, получавших 25 или 50 мг/кг энрофлоксацина, по сравнению с контрольными цыплятами. Кроме того, у цыплят, получавших энрофлоксацин в дозе 50 мг/кг, наблюдалось увеличение на 3,23 log частоты СЭ при ЧМТ, а также общего количества КОЕ СЭ на грамм содержимого слепой кишки по сравнению с контрольными цыплятами и увеличение на 0,45 log по сравнению с цыплятами, получавшими 25 мг/кг Энрофлоксацина. Сходные результаты были получены в испытании 2, где у цыплят, получавших обе дозы энрофлоксацина, наблюдалось увеличение частоты СЭ при ЧМТ, а также общего количества СЭ в содержимом слепой кишки по сравнению с контрольными цыплятами, не получавшими лечения (таблица 1).

    Таблица 1. Оценка энрофлоксацина у новорожденных цыплят, зараженных Salmonella Enteritidis (SE) a 24 ч после лечения антибиотиками при инвазии органов и колонизации слепой кишки .

    Результаты эксперимента 2 по оценке профилактического введения FloraMax-B11 ® или энрофлоксацина при инвазии органов и колонизации слепой кишки SH у новорожденных индюшат представлены в таблице 2.Значимых различий в инвазии органов ВГ между экспериментальными и контрольными группами не наблюдалось ( P > 0,05), тем не менее, у цыплят, получавших пробиотик, наблюдалось значительное снижение как частоты ВГ в ССТ, так и общего числа ВГ в содержимом слепой кишки при по сравнению с цыплятами, получавшими энрофлоксацин в дозе 50 мг/кг, или контрольными необработанными цыплятами ( P < 0,05). У индюшат, получавших энрофлоксацин, также наблюдалось значительное снижение общего количества молочнокислых бактерий (таблица 2).

    Таблица 2.Оценка профилактического введения FloraMax-B11 ® или энрофлоксацина при инвазии органов и колонизации слепой кишки Salmonella Heidelberg (SH) a у новорожденных индюшат .

    Результаты оценки профилактического введения FloraMax-B11 ® или энрофлоксацина на массу тела, массу тела и концентрацию FITC-D в сыворотке новорожденных индюшат в эксперименте 2 обобщены в таблице 3. Цыплята, получавшие 50 мг/кг Энрофлоксацин показал значительное увеличение BW и BWG по сравнению с цыплятами, получавшими пробиотики, или контрольными необработанными цыплятами.Интересно, что у индюшат этой группы также наблюдалось значительное увеличение проницаемости кишечника (таблица 3).

    Таблица 3. Оценка профилактического введения FloraMax-B11 ® или Энрофлоксацина по массе тела, приросту массы тела и концентрации FITC-D a в сыворотке новорожденных индюшат .

    В таблице 4 показаны результаты распределения по типам (кумулятивный % LCA) и прямого распределения по классам в % для всех образцов слепой кишки индюшат после профилактического введения FloraMax-B11 ® или энрофлоксацина в эксперименте 2.При анализе микробиома на уровне типа цыплята, получавшие пробиотик, имели более высокую долю Firmicutes, за ними следовали цыплята контрольной группы и цыплята, получавшие энрофлоксацин. У цыплят, получавших антибиотик, наблюдалось значительное снижение Bacteroidetes. Кроме того, значительное увеличение доли Proteobacteria наблюдалось у цыплят, получавших энрофлоксацин, или у контрольных цыплят по сравнению с цыплятами, получавшими FloraMax-B11 ® . На уровне класса было интересно наблюдать, что как контрольные цыплята, так и цыплята, получавшие энрофлоксацин, имели увеличение количества гаммапротеобактерий, но клостридии и бациллы были снижены у птиц, получавших энрофлоксацин, по сравнению с контрольными цыплятами или цыплятами, получавшими пробиотик (таблица 4).

    Таблица 4. Распределение по типу (кумулятивный % наименьший общий предок) и прямое распределение по классам в % для всех образцов слепой кишки индюшат после профилактического введения FloraMax-B11 ® или Энрофлоксацина .

    Обсуждение

    Значительные научные данные показали, что использование некоторых антибиотиков увеличивает кишечную колонизацию домашних животных устойчивыми к антибиотикам штаммами кишечных патогенов (28–32). Поскольку некоторые из этих патогенов чрезвычайно устойчивы ко многим антибиотикам и способны быстро развивать резистентность при воздействии (7, 13, 14), сообщалось, что профилактика или лечение антибиотиками фактически увеличивает частоту и серьезность этих инфекций у коммерческой птицы (33). , 34).Кроме того, отсутствие эффекта этих антибиотиков на резистентные энтеропатогены, некоторые исследователи показали, что антибиотики действительно могут вызывать нарушения микробиома (35), сопровождающиеся снижением короткоцепочечных жирных кислот (36, 37) и повышением люминального рН в дистальный отдел желудочно-кишечного тракта (38). В настоящем исследовании мы оцениваем практику применения в некоторых странах пятикратной рекомендованной дозы энрофлоксацина у новорожденных цыплят и индюшат в течение пяти дней подряд после помещения в питомник и изучаем их восприимчивость к сальмонеллезным инфекциям через 24 часа после лечения.В испытании 1 Эксперимента 1 цыплята, получавшие 25 или 50 мг/кг энрофлоксацина, были более восприимчивы к инвазии органов SE по сравнению с контрольными цыплятами, не получавшими лечения. Кроме того, у цыплят, получавших энрофлоксацин в дозе 50 мг/кг в испытании 1 и обеих дозах энрофлоксацина в испытании 2, наблюдалось значительное увеличение общих КОЕ СЭ в слепых кишках по сравнению с контрольными цыплятами, что свидетельствует о том, что такая практика управления применялась в странах с плохим контролем противомикробных препаратов. повышенная восприимчивость к инфекциям SE у цыплят-бройлеров.

    Salmonella Heidelberg входит в тройку основных сероваров Salmonella , выделенных от людей, когда продукты птицеводства были связаны с инфекцией (39–42). Кроме того, у домашних животных был выделен SH, устойчивый к различным противомикробным препаратам (43–45). В эксперименте 2 наши результаты согласуются с предыдущими публикациями нашей лаборатории, показывая не только низкую инвазивность SH для внутренних органов, но и эффективность FloraMax-B11 ® в снижении колонизации SH кишечника у индюшат (46).Опубликованные исследования также показали, что FloraMax ® -B11 повышает устойчивость к колонизации Salmonella spp. инфекций (47–51), снижает риск идиопатической диареи в коммерческих птичниках для выращивания индеек (52), а также повышает производительность и снижает затраты в птицеводстве (53, 54). В настоящем исследовании примечательно то, что индюшата, получавшие энрофлоксацин в дозе 50 мг/кг, были более восприимчивы к колонизации SH, и что этот эффект был связан со значительным снижением общего количества молочнокислых бактерий.У цыплят, получавших 50 мг/кг энрофлоксацина, наблюдалось значительное увеличение BW и BWG, однако в этой группе также наблюдалось значительное увеличение проницаемости кишечника. Метагеномный анализ содержимого слепой кишки с использованием программного обеспечения MEGAN можно использовать для интерактивного анализа и сравнения метагеномных и метатранскриптомных данных, тем самым обеспечивая фильтр процентной идентичности, который можно использовать для обеспечения следующих уровней процентной идентичности последовательностей для присвоения на данном таксономическом уровне ( 25). В эксперименте 2 цыплята, получавшие энрофлоксацин, имели более низкую долю Firmicutes и Bacteroidetes, что позволяет предположить, что широкий спектр действия энрофлоксацина оказывает сильное влияние на микробиом.Интересно, что у этих индюшат была самая высокая доля протеобактерий (как и в контроле). Такая высокая доза антибиотика также привела к значительному увеличению количества гаммапротеобактерий. Изменения в пропорции типа и класса были связаны с более высокой колонизацией кишечника SH, поскольку Salmonella принадлежит к типу Proteobacteria, классу Gammaproteobacteria. Кроме того, цыплята, получавшие энрофлоксацин, имели более низкие пропорции клостридий и бацилл по сравнению с контрольными цыплятами или цыплятами, получавшими пробиотики. Антибиотики, вводимые в низких дозах, широко используются в качестве стимуляторов роста домашней птицы уже более полувека. Однако точные механизмы этого эффекта неясны. Точно так же нет сообщений, описывающих влияние энрофлоксацина в низкой или высокой терапевтической дозе на микробиом или метаболомику у домашней птицы. Это первое сообщение, описывающее глубокие изменения в микробиоме индюшат, получивших высокую дозу энрофлоксацина, которые смещают его и делают их более восприимчивыми к экспериментальному заражению SH.

    Напротив, индюшата, получавшие пробиотик, имели самую высокую долю Firmicutes и Bacteroidetes, но самую низкую долю Proteobacteria. У этих птиц также наблюдалось значительное снижение количества гаммапротеобактерий, но, как и в контрольной группе, более высокая доля клостридий и бацилл. Сдвиг в этих бактериальных популяциях оказал положительное влияние на снижение колонизации SH после заражения и подтверждает наше предыдущее исследование (46).

    Результаты этих экспериментов позволяют предположить, что пятикратная рекомендуемая доза энрофлоксацина, антибиотика широкого спектра действия, может оказывать негативное влияние на микробиом, что может быть ответственно за усиление колонизации SH, что ранее было продемонстрировано с другими энтеропатогенами ( 4, 28, 29, 31, 32). В настоящем исследовании механизм изменения устойчивости к антибиотикам не изучался. Однако, независимо от задействованного механизма, в двух экспериментах после обработки энрофлоксацином наблюдалась повышенная восприимчивость индюшат к Salmonella . Кроме того, основываясь на изменениях микробиоты после введения фторхинолонов, включая увеличение количества протеобактерий, эти результаты позволяют предположить, что такая практика может предрасполагать к другим инфекционным заболеваниям, которые в дальнейшем потребуют использования дополнительных антибиотиков и расширения селекции устойчивости к противомикробным препаратам.Сообщалось, что приобретение устойчивости к фторхинолонам является многогранным процессом, который включает спонтанные точечные мутации, которые приводят к аминокислотным заменам в субъединицах топоизомеразы GyrA, GyrB, ParC или ParE, снижение экспрессии поринов наружной мембраны, гиперэкспрессию множественных насосов оттока лекарств. и/или резистентность к хинолонам, опосредованная плазмидами (1, 2, 7, 13, 15, 55, 56). Примечательно, что вызывающая тревогу заболеваемость некоторыми кишечными патогенами связана с неизбирательным использованием некоторых антибиотиков в животноводстве в некоторых странах (42, 45, 57–61).Поскольку продукты птицеводства были определены как важные резервуары инфекций человека, это вызывает растущую озабоченность общественного здравоохранения. Учитывая чрезмерное использование фторхинолонов и других антибиотиков в животноводстве, любые усилия по снижению риска резистентности имеют решающее значение. Результаты настоящего исследования и предыдущих исследований с использованием антибиотиков и других энтеропатогенов позволяют предположить, что профилактическое использование некоторых антибиотиков у домашней птицы повышает восприимчивость к колонизации сальмонеллами и инвазии органов.Таким образом, антибиотики должны быть ограничены инфекциями конкретных бактерий с известной чувствительностью к антибиотикам. Кроме того, наши результаты также подтверждают предыдущие исследования, предполагающие, что использование альтернатив, таких как пробиотики, может быть эффективным средством борьбы с сальмонеллезными инфекциями.

    Вклад авторов

    EM-B, NC, JL-T и VL: концепция и дизайн, сбор данных и составление рукописи. XH-V, JL, BH, GT: составление статьи и критический пересмотр ее важного интеллектуального содержания.OP-R, RM-G, VP-G, AW, MB, BM, KT и LG: сбор данных. BH и GT: анализ и интерпретация данных, составление рукописи и утверждение версии, которая будет представлена, и любой пересмотренной версии.

    Заявление о конфликте интересов

    Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

    Ссылки

    1. Пиддок Л., Кит К., Уайз Р.Устойчивость к хинолонам у Salmonella : клинический опыт. Ланцет (1990) 335:1459. дои: 10.1016/0140-6736(90)-R

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    2. Engberg J, Aarestrup FM, Taylor DE, Gerner-Smidt P, Nachamkin I. Устойчивость к хинолонам и макролидам у Campylobacter jejuni и C. coli : механизмы устойчивости и тенденции в изолятах человека. Emerg Infect Dis (2001) 7:24–34. дои: 10.3201/eid0701.010104

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    3.Мюррей Б.Э. Резистентность Shigella, Salmonella и других отдельных кишечных патогенов к противомикробным препаратам. Rev Infect Dis (1986) 8:S172–81. doi:10.1093/клиниды/8.Supplement_2.S172

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    4. Увайда А., Матар И., Чако К., Дэвидсон Дж. Появление устойчивых к противомикробным препаратам штаммов Salmonella typhi в Катаре: эпидемиология и терапевтические последствия. Trans R Soc Trop Med Hyg (1991) 85:790–2.дои: 10.1016/0035-9203(91)-А

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    6. Багер Ф., Хельмут Р. Эпидемиология резистентности к хинолонам у Salmonella . Vet Res (2001) 32:285–90. doi:10.1051/vetres:2001125

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    7. Альфредсон Д.А., Королик В. Резистентность к антибиотикам и механизмы резистентности у Campylobacter jejuni и Campylobacter coli . FEMS Microbiol Lett (2007) 277:123–32.doi:10.1111/j.1574-6968.2007.00935.x

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    10. Mead PS, Slutsker L, Dietz V, McCaig LF, Bresee JS, Shapiro C, et al. Заболевания и смерть, связанные с пищевыми продуктами, в Соединенных Штатах. Emerg Infect Dis (1999) 5:607–25. дои: 10.3201/eid0505.9

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    11. Randall LP, Cooles SW, Coldham NC, Stapleton KS, Piddock LJ, Woodward MJ. Модификация схем лечения энрофлоксацином домашней птицы, экспериментально инфицированной Salmonella enterica серовара Typhimurium DT104, для минимизации выбора резистентности. Antimicrob Agents Chemother (2006) 50:4030–7. doi: 10.1128/AAC.00525-06

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    13. Piddock L, Wise R. Механизмы резистентности к хинолонам и клинические перспективы. J Antimicrob Chemother (1989) 23:475–80. doi:10.1093/jac/23.4.475

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    16. Sierra-Arguello Y, Faulkner O, Tellez G, Hargis B, Pinheiro do Nascimento V. Использование карт FTA для транспортировки и обнаружения мутации gyrA Campylobacter jejuni у домашней птицы. Poult Sci (2016) 95:798–801. дои: 10.3382/ps/pev384

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    17. Menconi A, Kallapura G, Latorre JD, Morgan MJ, Pumford NR, Hargis BM, et al. Идентификация и характеристика молочнокислых бактерий в коммерческой пробиотической культуре. Biosci Microbiota Food Health (2014) 33:25–30. doi:10.12938/bmfh. 33.25

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    18. Национальный исследовательский совет. Потребность птицы в питательных веществах . 9-е изд. Вашингтон, округ Колумбия: Национальное академическое издательство (1994).

    Академия Google

    19. Yan Y, Kolachala V, Dalmasso G, Nguyen H, Laroui H, Sitaraman SV, et al. Временной и пространственный анализ клинических и молекулярных параметров колита, индуцированного декстрансульфатом натрия. PLoS One (2009) 4:e6073. doi:10.1371/journal.pone.0006073

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    20. Куттаппан В., Бергман Л., Викунья Э., Латорре Дж., Менкони А., Волчок Дж. и соавт.Модель кишечного воспаления птицы с помощью декстрансульфата натрия, опосредованного химической индукцией и ограничением корма у бройлеров. Poult Sci (2015) 94:1220–6. doi:10.3382/ps/pev114

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    21. Викунья Э., Куттаппан В., Галарза-Сибер Р., Латорре Дж., Фолкнер О., Харгис Б. и соавт. Влияние дексаметазона в корме на проницаемость кишечника, дифференциальное количество лейкоцитов и иммунные органы у цыплят-бройлеров. Poult Sci (2015) 94:2075–80.дои: 10.3382/ps/pev211

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    22. Vicuña E, Kuttappan V, Tellez G, Hernandez-Velasco X, Seeber-Galarza R, Latorre J, et al. Титрование дозы FITC-D для оптимального измерения кишечного воспаления у цыплят-бройлеров. Poult Sci (2015) 94:1353–9. doi:10.3382/ps/pev111

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    24. Cole JR, Wang Q, Cardenas E, Fish J, Chai B, Farris RJ, et al. Проект базы данных рибосом: улучшенное выравнивание и новые инструменты для анализа рРНК. Nucleic Acids Res (2009) 37:D141–5. doi:10.1093/нар/gkn879

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    26. Институт САН. Руководство пользователя SAS. Версия 9.1 . Кэри, Северная Каролина: SAS Institute Inc (2002).

    Академия Google

    27. Зар Дж. Биостатистический анализ . 2-е изд. Река Аппер-Сэдл, Нью-Джерси: Прентис-холл (1984).

    Академия Google

    28. Асеркофф Б., Беннет Дж.В. Влияние антибиотикотерапии при остром сальмонеллезе на фекальную экскрецию сальмонелл. N Engl J Med (1969) 281:636–40. дои: 10.1056/NEJM196

    2811202

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    30. Смит Х.В., Такер Дж.Ф. Влияние антибиотикотерапии на выделение с фекалиями Salmonella typhimurium экспериментально инфицированными цыплятами. J Hyg (1975) 75:275–92. дои: 10.1017/S0022172400047318

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    31. Мэннинг Дж., Харгис Б., Хинтон А. мл., Корриер Д., ДеЛоуч Дж., Крегер К.Влияние нитрофуразона или новобиоцина на Salmonella Enteritidis колонизацию слепой кишки и инвазию органов у кур леггорн. Avian Dis (1992) 36:334–40. дои: 10.2307/15

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    32. Manning J, Hargis B, Hinton A Jr, Corrier D, DeLoach J, Creger C. Влияние выбранных антибиотиков и антикокцидий на Salmonella Enteritidis колонизацию слепой кишки и инвазию органов у цыплят леггорн. Avian Dis (1994) 38: 256–61.дои: 10.2307/1591946

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    33. Сеуна Э., Нурми Э. Терапевтические испытания противомикробных препаратов и культивирования микрофлоры слепой кишки при инфекциях Salmonella infantis у цыплят. Poult Sci (1979) 58:1171–4. doi:10.3382/ps.0581171

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    34. Niewold T. Неантибиотическое противовоспалительное действие противомикробных стимуляторов роста, реальный механизм действия? Гипотеза. Poult Sci (2007) 86:605–9. дои: 10. 1093/пс/86.4.605

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    36. Hinton A Jr, Corrier DE, Spates GE, Norman JO, Ziprin RL, Beier RC, et al. Биологический контроль Salmonella typhimurium у молодых цыплят. Avian Dis (1990) 34:626–33. дои: 10.2307/15

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    37. Ван Дер Вилен П.В., Бистервельд С., Нотерманс С., Хофстра Х., Урлингс Б.А., ван Кнапен Ф.Роль летучих жирных кислот в развитии микрофлоры слепой кишки цыплят-бройлеров в период роста. Appl Environ Microbiol (2000) 66:2536–40. doi:10.1128/AEM.66.6.2536-2540.2000

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    38. Corrier DE, Hinton A Jr, Ziprin RL, Beier RC, DeLoach JR. Влияние пищевой лактозы на pH слепой кишки, бактериостатические летучие жирные кислоты и колонизацию Salmonella typhimurium цыплят-бройлеров. Avian Dis (1990) 34: 617–25. дои: 10.2307/15

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    39. Currie A, MacDougall L, Aramini J, Gaulin C, Ahmed R, Isaacs S. Замороженные куриные наггетсы, полоски и яйца являются ведущими факторами риска инфекции Salmonella Heidelberg в Канаде. Epidemiol Infect (2005) 133:809–16. дои: 10.1017/S0950268805004383

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    40. Bucher O, Holley RA, Ahmed R, Tabor H, Nadon C, Ng LK, et al.Наличие и характеристика Salmonella в куриных наггетсах, полосках и гранулированном корме для бройлеров. J Food Prot (2007) 70:2251–8.

    Реферат PubMed | Академия Google

    41. Дутил Л., Ирвин Р., Финли Р., Нг Л.К., Эйвери Б., Бурлин П. и соавт. Устойчивость к цефтиофуру у Salmonella enterica серовара Heidelberg из куриного мяса и человека. Canada Emerg Infect Dis (2010) 16:48–54. дои: 10.3201/eid1601.0

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    42. Ваз С., Стрек А., Майкл Г., Маркс Ф., Родригес Д., Дос Рейс Э. и др. Устойчивость к противомикробным препаратам и субтипирование подвида Salmonella enterica enterica serovar Enteritidis, выделенного в результате вспышек среди людей и домашней птицы на юге Бразилии. Poult Sci (2010) 89:1530–6. doi:10.3382/ps.2009-00453

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    43. Patchanee P, Zewde BM, Tadesse DA, Hoet A, Gebreyes WA. Характеристика полирезистентного штамма Salmonella enterica серовара Heidelberg, выделенного от людей и животных. Патог пищевого происхождения Dis (2008) 5:839–51. doi:10.1089/fpd.2008.0149

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    44. Чжао С., Уайт Д., Фридман С., Гленн А., Бликенстафф К., Айерс С. и соавт. Устойчивость к противомикробным препаратам в изолятах Salmonella enterica серовара Heidelberg из розничного мяса, включая птицу, с 2002 по 2006 год. Appl Environ Microbiol (2008) 74:6656–62. doi: 10.1128/AEM.01249-08

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    45.Borsoi A, Santin E, Santos L, Salle C, Moraes H, Nascimento V. Инокуляция только что вылупившихся цыплят-бройлеров двумя бразильскими изолятами штаммов Salmonella Heidelberg с различными профилями генов вирулентности, устойчивостью к противомикробным препаратам и моделями гель-электрофореза в пульсирующем поле для оценка изменений кишечника. Poult Sci (2009) 88:750–8. doi:10.3382/ps.2008-00466

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    46. Menconi A, Wolfenden A, Shivaramaiah S, Terraes J, Urbano T, Kuttel J, et al.Влияние пробиотической культуры молочнокислых бактерий на лечение Salmonella enterica серовара Heidelberg у новорожденных цыплят-бройлеров и индюшат. Poult Sci (2011) 90:561–5. doi:10.3382/ps.2010-01220

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    47. Higgins J, Higgins S, Vicente J, Wolfenden A, Tellez G, Hargis B. Временные эффекты пробиотической культуры молочнокислых бактерий на Salmonella у новорожденных бройлеров. Poult Sci (2007) 86:1662–6.дои: 10.1093/пс/86.8.1662

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    48. Vicente J, Higgins S, Bielke L, Tellez G, Donoghue D, Donoghue A, et al. Влияние пробиотических культур-кандидатов на распространенность Salmonella в коммерческих птичниках. J Appl Poult Res (2007) 16:471–6. doi:10.1093/japr/16.3.471

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    49. Tellez G, Pixley C, Wolfenden R, Layton S, Hargis B. Пробиотики/микробные препараты прямого кормления для борьбы с Salmonella у домашней птицы. Food Res Int (2012) 45:628–33. doi:10.1016/j.foodres.2011.03.047

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    50. Biloni A, Quintana C, Menconi A, Kallapura G, Latorre J, Pixley C, et al. Оценка воздействия EarlyBird в сочетании с FloraMax-B11 на Salmonella Enteritidis, морфологию кишечника и продуктивность цыплят-бройлеров. Poult Sci (2013) 92:2337–46. doi:10.3382/ps.2013-03279

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    51.Menconi A, Hernandez-Velasco X, Latorre JD, Kallapura G, Pumford NR, Morgan MJ, et al. Влияние хитозана как биологического дезинфицирующего средства на Salmonella typhimurium и аэробные грамотрицательные бактерии, вызывающие порчу, присутствующие на куриной коже. Int J Poult Sci (2013) 12:318–21. doi:10.3923/ijps.2013.318.321

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    52. Higgins S, Torres-Rodriguez A, Vicente J, Sartor C, Pixley C, Nava G, et al. Оценка стратегий вмешательства при идиопатической диарее в коммерческих птичниках для выращивания индеек. J Appl Poult Res (2005) 14:345–8. doi:10.1093/japr/14.2.345

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    53. Торрес-Родригес А., Хиггинс С., Висенте Дж., Вольфенден А., Гаона-Рамирес Г., Бартон Дж. и соавт. Влияние лактозы как пребиотика на массу тела индейки в коммерческих условиях. J Appl Poult Res (2007) 16:635–41. doi:10.3382/japr.2006-00127

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    54. Vicente JL, Torres-Rodriguez A, Higgins SE, Pixley C, Tellez G, Donoghue AM, et al.Влияние выбранного пробиотика на основе Lactobacillus spp. на Salmonella enterica серовара Enteritidis, инфицированных цыплят-бройлеров. Avian Dis (2008) 52:143–6. doi: 10.1637/7847-011107-ResNote

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    55. Ангуло Ф.Дж., Джонсон К.Р., Токс Р.В., Коэн М.Л. Происхождение и последствия устойчивых к противомикробным препаратам небрюшнотифозных сальмонелл : значение для использования фторхинолонов в пищевых животных. Устойчивость к микробным препаратам (2000) 6:77–83. doi:10.1089/mdr.2000.6.77

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    56. Крамп Дж. А., Медалла Ф. М., Джойс К. В., Крюгер А. Л., Хукстра Р. М., Уичард Дж. М. и соавт. Устойчивость к противомикробным препаратам среди инвазивных нетифозных Salmonella enterica в США, национальная система мониторинга устойчивости к противомикробным препаратам, 1996-2007 гг. Antimicrob Agents Chemother (2011) 55:1148–54. doi:10.1128/AAC.01333-10

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    57.Хофер Э., Дос Рейс ЭДС. Серовары Salmonella в эпизодах пищевых отравлений, зарегистрированных в Бразилии с 1982 по 1991 год. Rev Inst Med Trop São Paulo (1994) 36:7–9.

    Реферат PubMed | Академия Google

    58. Ирино К., Фернандес С., Тавечио А., Невес Б., Диас А. Развитие штаммов фага 4 типа Salmonella Enteritidis в штате Сан-Паулу, Бразилия. Rev Inst Med Trop São Paulo (1996) 38:193–6.

    Реферат PubMed | Академия Google

    59.Тавечио А.Т., Гиларди А.С., Фернандес С.А. «Мультиплексная ПЦР» идентификация атипичных и монофазных штаммов Salmonella enterica subsp. enterica серотип 1, 4, [5], 12: i:-в штате Сан-Паулу, Бразилия: частота и характер устойчивости к антибиотикам. Rev Inst Med Trop São Paulo (2004) 46:115–7. дои: 10.1590/S0036-46652004000200012

    Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

    60. Peirano G, Agersø Y, Aarestrup FM, dos Reis EMF, dos Prazeres Rodrigues D. Возникновение интегронов и генов устойчивости к противомикробным препаратам среди Salmonella enterica из Бразилии. J Antimicrob Chemother (2006) 58:305–9. дои: 10.1093/jac/dkl248

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    61. De Moura HM, Silva PR, da Silva PHC, Souza NR, Racanicci AMC, Santana ÂP. Устойчивость к противомикробным препаратам Campylobacter jejuni , выделенных из куриных тушек в Федеральном округе, Бразилия. J Food Prot (2013) 76:691–3. doi:10.4315/0362-028X.JFP-12-485

    Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

    Кампилобактер

    Высокая заболеваемость диареей Campylobacter , а также ее продолжительность и возможные осложнения делают ее очень важной с социально-экономической точки зрения.В развивающихся странах инфекция Campylobacter у детей в возрасте до 2 лет встречается особенно часто, иногда приводя к летальному исходу.

    Campylobacter в основном имеют спиралевидную, S-образную или изогнутую палочковидную форму. В настоящее время существует 17 видов и 6 подвидов, отнесенных к роду Campylobacter , из которых наиболее часто регистрируемыми в заболеваниях человека являются C. jejuni (подвид jejuni ) и C. coli .Другие виды, такие как C. lari и C. upsaliensis , также были выделены у пациентов с диарейными заболеваниями, но о них сообщалось реже.

    Болезнь

    Кампилобактериоз – это заболевание, вызванное инфекцией Campylobacter :

    • Начало симптомов заболевания обычно возникает через 2–5 дней после заражения бактериями, но может варьироваться от 1 до 10 дней.
    • Наиболее распространенные клинические симптомы инфекции Campylobacter включают диарею (часто с кровью), боль в животе, лихорадку, головную боль, тошноту и/или рвоту.Симптомы обычно длятся от 3 до 6 дней.
    • Смерть от кампилобактериоза наступает редко и обычно ограничивается очень маленькими детьми или пожилыми пациентами или теми, кто уже страдает от другого серьезного заболевания, такого как СПИД.
    • С разной степенью частоты сообщалось о таких осложнениях, как бактериемия (наличие бактерий в крови), гепатит, панкреатит (инфекции печени и поджелудочной железы соответственно) и невынашивание беременности. Постинфекционные осложнения\r\n могут включать реактивный артрит (болезненное воспаление суставов, которое может длиться несколько месяцев) и неврологические расстройства, такие как синдром Гийена-Барре, форма паралича, похожая на полиомиелит, которая может привести к респираторным и тяжелым заболеваниям. г\н неврологическая дисфункция в небольшом числе случаев.

    Источники и передача

    Виды Campylobacter широко распространены среди большинства теплокровных животных. Они распространены у пищевых животных, таких как домашняя птица, крупный рогатый скот, свиньи, овцы и страусы; и у домашних животных, включая кошек и собак. Бактерии также были обнаружены в моллюсках.

    Обычно считается, что основным путем передачи является пищевое отравление через недоваренное мясо и мясные продукты, а также через сырое или зараженное молоко. Загрязненная вода или лед также являются источником инфекции.Часть случаев возникает после контакта с загрязненной водой во время отдыха.

    Кампилобактериоз представляет собой зооноз, заболевание, передающееся человеку от животных или продуктов животного происхождения. Чаще всего туши или мясо контаминируются Campylobacter из фекалий во время убоя. У животных Campylobacter редко вызывает заболевание.

    Относительный вклад каждого из вышеперечисленных источников в общее бремя болезней неясен, но считается, что потребление недоваренной зараженной птицы является основным фактором.Поскольку на вспышки из общего источника приходится довольно небольшая доля случаев, подавляющее большинство отчетов относятся к спорадическим случаям без четкой закономерности.

    Поэтому оценить важность всех известных источников крайне сложно. Кроме того, широкое распространение Campylobacter также препятствует разработке стратегий контроля по всей пищевой цепи. Однако в странах, где были приняты специальные стратегии по снижению распространенности Campylobacter среди живой птицы, наблюдается аналогичное снижение случаев заболевания людей.

    Лечение

    Лечение обычно не требуется, за исключением восполнения электролитов и регидратации. Антимикробное лечение рекомендуется в инвазивных случаях (когда бактерии внедряются в клетки слизистой оболочки кишечника и повреждают ткани) или для устранения состояния носительства (состояние людей, которые содержат Campylobacter в своем организме и продолжают выделять бактерии, оставаясь бессимптомными).

    Методы профилактики

    Существует ряд стратегий, которые можно использовать для предотвращения заболевания от Campylobacter :

    • Профилактика основана на мерах контроля на всех этапах пищевой цепочки, от сельскохозяйственного производства на ферме до переработки , производство и приготовление продуктов питания как в коммерческих, так и в домашних условиях.
    • В странах, где нет надлежащих систем удаления сточных вод, фекалии и предметы, загрязненные фекалиями, перед удалением могут нуждаться в дезинфекции.
    • Меры по снижению распространенности Campylobacter среди домашней птицы включают усиленную биобезопасность во избежание передачи Campylobacter из окружающей среды стаду птиц на ферме. Этот вариант борьбы осуществим\r\n только при содержании птиц в условиях закрытого содержания.
    • Надлежащая гигиеническая практика убоя снижает загрязнение туш фекалиями, но не гарантирует отсутствие Campylobacter в мясе и мясных продуктах. Обучение работников скотобоен и производителей сырого мяса гигиеническому обращению с пищевыми продуктами необходимо для сведения загрязнения к минимуму.
    • Методы профилактики инфекций на домашних кухнях аналогичны тем, которые используются для борьбы с другими бактериальными заболеваниями пищевого происхождения.
    • Бактерицидная обработка, такая как нагревание (например, варка или пастеризация) или облучение, является единственным эффективным методом удаления Campylobacter из зараженных пищевых продуктов.

    Ответ ВОЗ

    В партнерстве с другими заинтересованными сторонами ВОЗ решительно пропагандирует важность безопасности пищевых продуктов как важнейшего элемента обеспечения доступа к безопасным и питательным продуктам питания.ВОЗ предоставляет политику и рекомендации, которые охватывают всю пищевую цепочку от производства до потребления, используя различные виды опыта в разных секторах.

    ВОЗ работает над укреплением систем безопасности пищевых продуктов во все более глобализированном мире. Установление международных стандартов безопасности пищевых продуктов, усиление эпиднадзора за болезнями, просвещение потребителей и обучение работников пищевой промышленности безопасному обращению с пищевыми продуктами являются одними из наиболее важных мер по предотвращению болезней пищевого происхождения.

    В сотрудничестве с Продовольственной и сельскохозяйственной организацией Объединенных Наций (ФАО), Всемирной организацией здравоохранения животных (МЭБ) и Сотрудничающим центром ВОЗ в Утрехтском университете ВОЗ опубликовала отчет Глобальный взгляд на кампилобактериоз в 2012 г. .

    ВОЗ укрепляет потенциал национальных и региональных лабораторий по эпиднадзору за патогенами пищевого происхождения, такими как Campylobacter и Salmonella .

    ВОЗ также продвигает интегрированный эпиднадзор за устойчивостью патогенов к противомикробным препаратам в пищевой цепи, собирая образцы у людей, пищевых продуктов и животных и анализируя данные по секторам.

    ВОЗ совместно с ФАО оказывает помощь государствам-членам, координируя международные усилия по раннему выявлению вспышек болезней пищевого происхождения и реагированию на них через сеть национальных органов в государствах-членах.

    ВОЗ также предоставляет научные оценки в качестве основы для международных стандартов на пищевые продукты, руководств и рекомендаций, разработанных Комиссией Codex Alimentarius ФАО/ВОЗ для предотвращения болезней пищевого происхождения.

    Рекомендации для населения и путешественников

    Следующее руководство поможет людям оставаться в безопасности во время путешествия:

    • Убедитесь, что пища правильно приготовлена ​​и остается горячей при подаче.
    • Избегайте сырого молока и продуктов, изготовленных из сырого молока. Пейте только пастеризованное или кипяченое молоко.
    • Избегайте использования льда, если он не сделан из безопасной воды.
    • Если безопасность питьевой воды сомнительна, прокипятите ее или, если это невозможно, продезинфицируйте надежным дезинфицирующим средством пролонгированного действия (обычно доступны в аптеках).
    • Тщательно и часто мойте руки с мылом, особенно после контакта с домашними или сельскохозяйственными животными или после посещения туалета.
    • Тщательно мойте фрукты и овощи, особенно если их едят сырыми. По возможности овощи и фрукты следует очищать от кожуры.

    Рекомендации для работников пищевой промышленности

    ВОЗ предоставляет следующие рекомендации для лиц, работающих с пищевыми продуктами:

    • Как профессиональные, так и домашние работники пищевой промышленности должны проявлять бдительность при приготовлении пищи и соблюдать гигиенические правила приготовления пищи.
    • Профессиональные работники пищевой промышленности, страдающие лихорадкой, диареей, рвотой или видимыми инфицированными поражениями кожи, должны немедленно сообщить об этом своему работодателю.
    • ВОЗ Пять ключей к более безопасным продуктам питания служат основой для образовательных программ по обучению работников пищевой промышленности и просвещению потребителей. Они особенно важны для предотвращения пищевых отравлений. Пять ключей:
      • содержать в чистоте
      • разделять сырые и приготовленные
      • тщательно готовить
      • хранить продукты при безопасной температуре
      • использовать безопасную воду и сырье.

     

    ","datePublished":"2020-05-01T11:40:00.0000000+00:00","image":"https://www.who.int/images/default-source/imported/chicken-coop-indonesia-jpg.jpg?sfvrsn=c9948be0_0","издатель":{"@type":"Организация","название":"Всемирная организация здравоохранения: ВОЗ","logo":{"@type":"ImageObject","url":"https://www.who.int/Images/SchemaOrg/schemaOrgLogo.jpg","width":250,"height" :60}},"dateModified":"2020-05-01T11:40:00.0000000+00:00","mainEntityOfPage":"https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/ кампилобактер","@context":"http://schema.org","@type":"Статья"}; .

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.